【求助】细胞转染后细胞总是死是怎么回事?

我最近在做细胞转染,用的是鱼的细胞系,贴壁生长,用MEM培养基加10%的FBS培养,转染实验时,将细胞接入6孔板里,待贴壁后,将培养基吸出,用opti-MEM无血清培养基洗两次,然后每孔加2mlopti-MEM无血清培养基,加预先混好的Lipo2000与质粒的混合稀释液,每孔加0.5ml,待4h后,换成正常培养液,然而在4h换液时,细胞已经有大量的死亡,换液后细胞也没有变好,不知道是什么原因,请各位大侠帮忙分析一下吧~~
还有,转染试剂是应该用无血清培养基稀释吧?用正常培养基稀释会不会有什么问题呢?

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  • loli (2014-12-06 11:17:36)


    你的质粒有去内毒素吗?还有那个“预先混好的Lipo2000与质粒的混合稀释液”比例是怎样的?Lipo2000对细胞也是有毒性的,还有转染时细胞的密度是多少?
  • 33号 (2014-12-06 11:18:16)

    QUOTE:

    原帖由 loli 于 2014-12-6 11:17 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '')

    你的质粒有去内毒素吗?还有那个“预先混好的Lipo2000与质粒的混合稀释液”比例是怎样的?Lipo2000对细胞也是有毒性的,还有转染时细胞的密度是多少? ...
    质粒是用无内毒素的试剂盒提取的,分别用250微升opti-MEM稀释质粒4微克、Lipo2000 10微升,然后混合均匀,20分钟后加入到孔里。细胞密度大约是10*6吧,请问我哪里出问题了呀?非常感谢!
  • loli (2014-12-06 11:18:37)

    QUOTE:

    原帖由 33号 于 2014-12-6 11:18 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '')

    质粒是用无内毒素的试剂盒提取的,分别用250微升opti-MEM稀释质粒4微克、Lipo2000 10微升,然后混合均匀,20分钟后加入到孔里。细胞密度大约是10*6吧,请问我哪里出问题了呀?非常感谢! ...
    可能是Lipo2000 本身对细胞的毒性较大,我之前也是用Lipo2000 做的转染,效果也不是很好,后面我换了Lipofectamine™ LTX Reagent,感觉比Lipo2000好些,当时是一个师姐定有,借用来试了一下,后面我们实验室都改订Lipofectamine™ LTX Reagent了,你可以试一下,仅供参考。
  • 49888 (2014-12-06 11:18:57)


    支持楼上的说法,Lipo2000对细胞伤害还是很大的。鱼的细胞系没有做过,具体什么比例没有摸索过。你可以适当的摸索一下Lipo2000与质粒的转染比例,寻找最佳的转染条件。可以试试polo。
  • mingming0638 (2014-12-06 11:19:16)

    降低转染量试试,转染试剂对细胞毒性较大,我们实验室早已经不用Lipo2000了,一方面是它用量大毒性大,二则是太贵了。
  • 33号 (2014-12-06 11:19:34)

    QUOTE:

    原帖由 mingming0638 于 2014-12-6 11:19 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '')
    降低转染量试试,转染试剂对细胞毒性较大,我们实验室早已经不用Lipo2000了,一方面是它用量大毒性大,二则是太贵了。
    那请问你们现在都用什么牌子的转染试剂呢?谢谢~
  • mingming0638 (2014-12-06 11:19:52)


    Vigofect,应该是叫这个名字,同体积下便宜很多,而且用量少几倍,不需要用无血清培养基换液,通常用在293T呀HCT116呀是没区别的,但是对于一些转染效率低的细胞系来说,效果还是不如LIPO,一分钱一分货嘛
  • idea2011 (2014-12-06 11:20:12)


    可以免费试用一下美国SignaGen的转染试剂,效率高而且毒性低,价格也很便宜