【分享帖】Chromatin Immunoprecipitation(ChIP)

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Chromatin Immunoprecipitation(ChIP)实验指南及技术总结




ChIP是一项比较流行的研究转录因子( transcription factor, TF)与启动子(promoter)相互结合的实验技术。由于ChIP采用甲醛固定活细胞或者组织的方法,所以能比较真实的反映细胞内TF与Promoter的结合情况。这个优势是EMSA这个体外研究核酸与蛋白相互结合的实验方法所不能比拟的。当用甲醛处理时,相互靠近的蛋白与蛋白,蛋白与核酸(DNA或RNA)之间会产生共价键。细胞内,当TF与Promoter相互结合(生物意义上的结合)时,它们必然靠的比较近,或者契合在一起,这个时候用甲醛处理,能使它们之间产生共价键。
一般ChIP的流程是:甲醛处理细胞——收集细胞,超声破碎——加入目的蛋白的抗体,与靶蛋白-DNA复合物相互结合——加入Protein A,结合抗体-靶蛋白-DNA复合物,并沉淀——对沉淀下来的复合物进行清洗,除去一些非特异性结合——洗脱,得到富集的靶蛋白-DNA复合物——解交联,纯化富集的DNA片断——PCR分析。
在PCR分析这一块,比较传统的做法是半定量-PCR。但是现在随着荧光定量PCR的普及,大家也越来越倾向于Q-PCR了。此外还有一些由ChIP衍生出来的方法。例如RIP(其实就是用ChIP的方法研究细胞内蛋白与RNA的相互结合,具体方法和ChIP差不多,只是实验过程中要注意防止RNase,最后分析的时候需要先将RNA逆转录成为cDNA);还有ChIP-chip(其实就是ChIP富集得到的DNA片段,拿去做芯片分析,做法在ChIP的基础上有所改变,不同的公司有不同的做法,要根据公司的要求来准备样品)。
我ChIP做的比较多,RIP和ChIP-chip也做过(ChIP-chip用的是罗氏Nimblegen的产品)。这边主要和大家交流一下做ChIP实验的心得。当然这个帖子肯定会有很多漏洞,但是希望能一起讨论一下。另外如果有同学对RIP或者ChIP-chip有兴趣,可以在回帖中指出来,我尽量及时回答。

PS:我的实验步骤基本参考upstate试剂盒的说明书。


[ 本帖最后由 superboy 于 2013-4-13 10:45 编辑 ]
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  • superboy (2013-4-13 10:45:25)


    一、ChIP实验步骤

    第一天:
    (一)、细胞的甲醛交联与超声破碎。
    1、取出1平皿细胞(10cm平皿),加入243ul 37%甲醛,使得甲醛的终浓度为1%。(培养基共有9ml)
    2、37摄氏度孵育10min。
    3、终止交联:加甘氨酸至终浓度为0.125M。
    450ul 2.5M甘氨酸于平皿中。混匀后,在室温下放置5min即可。
    4、吸尽培养基,用冰冷的PBS清洗细胞2次。
    5、细胞刮刀收集细胞于15ml离心管中(PBS依次为5ml,3ml和3ml)。预冷后2000rpm 5min收集细胞。
    6、倒去上清。按照细胞量,加入SDS Lysis Buffer。使得细胞终浓度为每200ul含2×106个细胞。这样每100ul溶液含1×106个细胞。再加入蛋白酶抑制剂复合物。
    假设MCF7长满板为5×106个细胞。本次细胞长得约为80%。即为4×106个细胞。因此每管加入400ul SDS Lysis Buffer。
    将2管混在一起,共800ul。
    7、超声破碎:VCX750,25%功率,4.5S冲击,9S间隙。共14次。

    (二)、除杂及抗体哺育。
    8、超声破碎结束后,10,000g 4度离心10min。去除不溶物质。
    留取300ul做实验,其余保存于-80度。
    300ul中,100ul加抗体做为实验组;100ul不加抗体做为对照组;100ul加入4ul 5M NaCl (NaCl终浓度为0.2M),65度处理3h解交联,跑电泳,检测超声破碎的效果。
    9、在100ul的超声破碎产物中,加入900ul ChIP Dilution Buffer和20ul的50×PIC。
    再各加入60ul Protein A Agarose/Salmon Sperm DNA。4度颠转混匀1h。
    10、1h后,在4度静置10min沉淀,700rpm离心1min。
    11、取上清。各留取20ul做为input。一管中加入1ul 抗体,另一管中则不加抗体。4度颠转过夜。

    (三)、检验超声破碎的效果。
    取100ul超声破碎后产物,加入4ul 5M NaCl,65度处理2h解交联。分出一半用酚/氯仿抽提。电泳检测超声效果。

    第二天:
    (一)、免疫复合物的沉淀及清洗。
    12、孵育过夜后,每管中加入60ul Protein A Agarose/Salmon Sperm DNA。
    4度颠转2h。
    13、4度静置10min后,700rpm离心1min。除去上清。
    14、依次用下列溶液清洗沉淀复合物。清洗的步骤:加入溶液,在4度颠转10min,4度静置10min沉淀,700rpm离心1min,除去上清。
    洗涤溶液:a. low salt wash buffer----one wash
    b. high salt wash buffer-----one wash
    c. LiCl wash buffer------one wash
    d. TE buffer------two wash
    15、清洗完毕后,开始洗脱。洗脱液的配方:100ul 10%SDS, 100ul 1M NaHCO3, 800ul ddH2O,共1ml。
    每管加入250ul洗脱buffer,室温下颠转15min,静置离心后,收集上清。重复洗涤一次。最终的洗脱液为每管500ul。
    16、解交联:每管中加入20ul 5M NaCl(NaCl终浓度为0.2M)。
    混匀,65度解交联过夜。

    第三天:
    (一)、DNA样品的回收
    17、解交联结束后,每管加入1ul RNaseA(MBI),37度孵育1h。
    18、每管加入10ul 0.5M EDTA, 20ul 1M Tris.HCl(PH 6.5),2ul 10mg/ml 蛋白酶K。
    45度处理2h。
    19、DNA片段的回收―――omega胶回收试剂盒。最终的样品溶于100ul ddH2O。

    (二)、PCR分析
  • superboy (2013-4-13 10:49:47)


    二、技术总结
    (一)、关于细胞
    细胞的生长状态要好。因为细胞的生长状态直接影响细胞内部的基因表达调控网络,也很有可能影响你所研究的TF与其靶Promoter的结合。
    一般细胞长到75%-80%比较好。

    (二)、关于抗体!
    抗体是实验成败的致命因素之一!必须是IP级别的抗体,另外如果经济条件许可的话,尽量买大厂的抗体。不推荐国产抗体和santa cruz的抗体,即使是IP级别的。
    单抗与多抗的选择也需要仔细考虑。两种抗体各有利弊。单抗特异性强,背景低。但是单抗有一个致命的弱点,就是识别位点单一,而在ChIP甲醛交联的过程中,很有可能该位点被其它蛋白或核酸结合而被封闭,导致单抗不能识别靶蛋白。多抗虽然没有这个问题,但是多抗特异性较差,背景可能会偏高。
    一般而言,如果没有十足把握(单抗的识别位点远离靶蛋白与核酸结合的区域),选择多抗比较稳妥一些。

    (三)、关于交联与超声破碎!
    这一块的确是ChIP实验中比较难把握的部分。交联的程度会影响到超声破碎的效果,交联的程度越高,超声破碎就越不易把基因组打碎成小片段。
    交联不充分,只有一部分靶蛋白与其Promoter相结合,富集得到的Promoter的量不高,实验假阴性。交联过充分,基因组上结合了太多的蛋白,对超声破碎造成障碍。另外也会增加背景。
    一般来讲,按照我的经验,交联条件取决于细胞类型。不同的细胞系,交联的条件也不一样。例如:NIH-3T3的交联条件是室温(25摄氏度)下15min,1%的甲醛浓度,而别的细胞系则可能完全不一样。而超声破碎的条件,机器不一样,条件也不一样。当然如果你有bioruptor这样的神器,那么超声破碎对你而言就是小菜一碟了。
    一般,理想的超声破碎得到的片段大小是200bp-1000bp。但是200bp-2000bp的范围也是可以接受的。

    (四)、关于操作
    希望尽可能的保持低温(4度)。
    沉淀的时候可以先在4度放置一会,等它自然沉降一些,再超低转速(500rpm等)离心使其完全沉降。
    虽然说明书上说ChIP实验的过程中有几个可以停顿的地方,我还是希望你能够连续把它做完,直到PCR结果出来为止。尽量避免实验中不可预知的影响因素。

    (五)、关于解交联
    虽然说明书上说4小时已经足够,但是我还是希望你可以解交联过夜。因为在那样的环境里,DNA不会降解,过夜解交联更充分些。只是不要忘记在EP管口封上封口膜。

    (六)、关于DNA片段的回收
    需要注意的是:样品中SDS样品较高,普通的PCR产物回收试剂盒回收,很有可能会在最终的样品中混入SDS,影响PCR实验结果。
    小Tip:过柱前,在样品中加入一定量的异丙醇,能有效的消除SDS沉淀。

    另外还有一些,一时想不起来。以后慢慢补充吧。
  • H2O (2013-4-13 10:50:19)


    当用甲醛处理时,相互靠近的蛋白与蛋白,蛋白与核酸(DNA或RNA)之间会产生共价键。细胞内,当TF与Promoter相互结合(生物意义上的结合)时,它们必然靠的比较近,或者契合在一起,这个时候用甲醛处理,能使它们之间产生共价键。

    如果是表达的蛋白彼此很靠近,是否会交联成为一个大的团块么?
    期待战友们的讨论
  • Ao7 (2013-4-13 10:50:39)


    如果是表达的蛋白彼此很靠近,是否会交联成为一个大的团块么?

    你说的对。但是什么是“很靠近”呢?酶和底物;组蛋白和基因组;转录因子和启动子,那种才是靠的很近的关系。
  • xueyouzhang (2013-4-13 10:51:00)


    对于chip on chip 芯片数据有没有研究呢?
  • mickeylin (2013-4-13 10:51:40)


    非常感谢楼主分享自己的宝贵经验!

    有个问题想问一下,我最近也打算做CHIP,看到很多文献都是用的Upstate的试剂盒,请问楼主也是用的该公司的Kit吗?谢谢!
  • lxh031 (2013-4-13 10:52:10)


    请问:可否用Chip法检测NF-kB与DNA的结合能力吗?与EMSA相比有什么优势吗?
  • superboy (2013-4-13 10:52:58)

    对于chip on chip 芯片数据有没有研究呢?"

    ===============================================================

    罗氏直接把分析好的数据寄给我了,我还没有能力进行芯片的数据分析,呵呵。
  • superboy (2013-4-13 10:53:27)

    ”很多文献都是用的Upstate的试剂盒,请问楼主也是用的该公司的Kit吗?“

    ======================================================================================================

    我也是用了Upstate的Kit。因为一开始,只有Upstate有ChIP的试剂盒,但是现在有很多厂家开发了ChIP的试剂盒,选择面也很广了。
  • superboy (2013-4-13 10:54:01)

    ”可否用Chip法检测NF-kB与DNA的结合能力吗?与EMSA相比有什么优势吗?“

    ===============================================================================================================

    与EMSA相比,优势就是直接研究了体内的情况。EMSA,并不能真实地模拟体内的环境,蛋白分子和核酸分子的浓度也发生变化了,更不用说蛋白分子和核酸分子在细胞内的定位问题。
    “所谓的EMSA,其实就是在体外,将某一种核酸和某一种蛋白混合在一起,然后看它们是否能相互结合。
    但是众所周知,体外环境和体内环境是完全不同的。
    很有可能在体内,这种核酸和这种蛋白由于细胞区域定位的问题,根本不会相遇,也根本不会有结合的事情发生。但是在体外,当它们相遇时,它们却能结合。
    也有可能在体内,这种核酸和蛋白的浓度相当的低,在这样低浓度的状况下,它们不会结合。但是在体外EMSA实验中,核酸和蛋白的浓度都增加了好几十倍。导致反应向阳性的方向进行,这种情况又该如何解释?
    所以EMSA结果阳性,是能结合的必要条件,但却不是充分条件。”
    ChIP结合realtime-PCR,基本上还是能相对真实的反映细胞内部转录因子和启动子的结合。但是具体问题具体分析。
  • abc816 (2013-4-13 10:54:26)


    请问楼主做RIP用的什么试剂盒?
  • superboy (2013-4-13 10:55:16)

    QUOTE:

    原帖由 abc816 于 2013-4-13 10:54 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '')

    请问楼主做RIP用的什么试剂盒?
    RIP没有用试剂盒,是根据下面链接里的方法做的。
    自己配了试剂。这个protocol不错,效果蛮好的,推荐一下:)
    cuturl('http://www.epigenome-noe.net/researchtools/protocol.php?protid=28')
  • qqq111 (2013-4-13 10:55:46)


    RIP有专门的试剂盒,8月份新出的,12T据说要五千多,还要配套磁力设备要1千多
    17-700 Magna RIP—12 IP reactions, includes negative
    control IgGs, no positive control
    •17-701 EZ-Magna RIP—12 IP reactions, includes 2
    reactions of positive control AbAnti-SNRNP70
    •17-704 Magna RIP (Quad)—48 IP reactions
    有用upstate ChIP试剂盒基础上改装来做RIP的同志吗?
  • qqq111 (2013-4-13 11:02:54)

    RIP的产物除了荧光定量PCR,还可以进一步做那些实验呢,希望和有经验的同志们交流
  • any333 (2013-4-13 11:03:40)


    借这个帖子忽然想到个问题,目前研究蛋白和蛋白互作有经典的酵母双杂交以及后续的BiFC等;研究蛋白和DNA或是RNA互作有ChIP,如果是研究DNA与DNA或RNA之间的互作有什么方法吗?或者在信号途径的传导中,目前有研究是做DNA与DNA或RNA互作而调控的吗?有高人能回答下吗。
  • abc816 (2013-4-13 11:04:11)


    CHIP的试剂盒用millipore-upstate,货号17-371最为常用,效果老好了,有需要随时联系!
    不是卖试剂哦!
  • 紫烟 (2013-4-13 11:04:36)


    好贴,收藏了先。我也打算做ChIP,目前对一些细节还不是很清楚,能否请教一下,启动子区的引物如何设计,如何保证其特异性?谢谢!
  • duoduo (2013-4-13 11:14:58)


    请教达人:“在样品中加入一定量的异丙醇,能有效的消除SDS沉淀。”
    这个怎么加?
  • lxh031 (2013-4-13 12:32:43)

    我对ChIP 的control 不明白。请教 ChIP在Q-PCR 反应中如何选择control, input 是control 吗? Q-PCR 数据如何分析?
    请楼主最好举例说明。多谢!!
  • superboy (2013-4-13 12:33:40)

    启动子区很长,一般选用文献上已经定位好的启动子区,有些文献甚至会把引物序列公布出来,已经定位好的启动子区一般不会超过200bp。如果你研究的启动子没有细化定位过,那就很麻烦了。

    异丙醇加个四分之一嘛

    input是用来衡量不同种类的细胞的细胞量的。比如两种细胞A和B,研究某转录因子在这两种细胞中与某一个启动子的结合情况。那么细胞A和B的起始量必须是一样的,这个起始量就用input来控制。相信你已经看了protocol了,在操作过程的某一阶段中,取出等量的样品做为input,衡量input中该启动子的量,算出一定的比例(就是细胞量的比例)。最后ChIP得到的得到的数据要除以这个input的比例,方才是相同细胞量下结合情况的差异。
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