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【求助】做WB蛋白浓度低怎么办?
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发表于: 2014-5-29 17:09 作者: 大尾巴 来源: 分析测试百科网
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【求助】做WB蛋白浓度低怎么办?
我准备做WB提了好多蛋白,当时没做蛋白定量。现在定量OD值多在0.6左右,请问有什么浓缩的办法使蛋白浓度增高?急!万分感谢!
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【求助】做WB蛋白浓度低怎么办?
我也来说两句
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xyw5
(2014-5-29 17:09:25)
用5XSDS上样缓冲液,这样蛋白样品和缓冲液比例是4:1;还有就是煮沸蛋白变性的时候可以适当打开EP管盖,让水分挥发点,WB还是比较灵敏的,所以不要太担心
大尾巴
(2014-5-29 17:09:48)
蛋白样品和缓冲液最大量能加到多少微升?我以前都是加到25ul,二者比例20:5. 另外,煮沸让水分蒸发会不会影响二者的比例,影响跑胶的效果?还有,WB要求蛋白质量最少是多少?我刚开始做WB,很多不懂,请不要见笑!
谢谢!
mickeylin
(2014-5-29 17:10:05)
好象可以检测到钠克级
建议用发光法显色,较DAB显色提高1000倍灵敏度
cwcwcww
(2014-5-29 17:10:22)
最主要是你在提蛋白的时候裂解液可少加点,这样可以提高总蛋白的浓度,OD值在0.6左右太小了,直接会影响到你下一步加样时上样量的大小,要是需要大点的上样量的话,上样孔会负载不了。可用10×buffer的上样缓冲液,可使体积更小点儿。0.2um的PVDF膜可检测到2~5ng(影响中是)的蛋白,但是总蛋白的上样量需要摸索(根据目的蛋白的表达量),楼上战友说得对,用ECL比DAB灵敏的多,如果你的上样量不足,最好还是用ECL检测。
summerxx
(2014-5-29 17:10:39)
你的od值0.6难道是没有稀释的原液,那也太小了啊!不过用化学发光法应该还有可能做出来。试试才知道。
bangqi_k
(2014-5-29 17:10:56)
找不到怎么办?
小野花
(2014-5-29 17:11:12)
除了wgqsdams 的建议之外,还有一个方法,如果上样量太大,一次上不了,可以先上一部分,等跑下去一点之后再加,反正要经过浓缩胶浓缩的,不会有影响。
sunnyB
(2014-5-29 17:11:31)
使蛋白浓度增高还有一个办法,就是使用冻干机使蛋白浓度提高。呵呵,不过这种方法很昂贵啊,如果实验室有可以试一试是可行的。wgqsdams 战友说的有道理,在提蛋白的时候裂解液可少加点,这样就可以提高浓度了。还有一个办法就是用较厚的电泳玻璃片(具体的我记不清了,应该在1.5cm左右吧,我们通常用的是0.75cm的上样量25ul),上样量可以达到100ul。仅供参考,祝好运!!!
大尾巴
(2014-5-29 17:11:53)
谢谢楼上给我战友的指点!
我想每次提完蛋白后就定量,然后将计算好的蛋白量与缓冲液按4:1混合后煮沸,保存,下次做WB时直接拿来就可以了。这样有俩个好处:1避免蛋白降解 2避免每次做蛋白定量损失蛋白。不知这样做是否可以?保存温度?我问师兄师姐有的说可以有的说不行需现用现配,请指教!谢谢!
l另外,10xbuffer是用来做SDS/PAGE的上样缓冲液吗?我知道的10xbuffer是DNA上样缓冲液啊!二者是否可以通用?
祝各位战友一切顺利!
xyw5
(2014-5-29 17:12:29)
将蛋白提取后测完浓度就可以根据每次的用量分装保存了,保存在-80度的冰箱,每次使用时取一管,再加上缓冲液煮沸(煮沸也不是绝对的)上样。先加缓冲液煮沸后保存不太好,因为缓冲液里有SDS,低温下容易形成结晶,影响蛋白的变性。
蛋白的buffer和DNA的buffer成分不一样,不能互用,10xbuffer只要在5xbuffer的基础上各溶质的量加倍就行了,这样可减少1/2的上样buffer,提高蛋白的上样量。
云端ing
(2014-5-29 17:12:51)
上冻干机应该也是一个好方法,现在很多实验室都有的
damingxia0904
(2014-5-29 17:13:08)
请问冻干机能直接干燥液态样品吗?
IAM007
(2014-5-29 17:17:12)
冻干是好方法!我做过培养液中细胞因子的WB,用冻干法效果不错,省得买ELISA盒子了~~:〉
ps:冻干主要用于溶液的浓缩。
abc816
(2014-5-29 17:17:41)
我提个建议,大家看行不行.
用20%的三氯乙酸(TCA)把蛋白沉淀,除去上清,然后加制样buffer,这样也相当于是浓缩了啊.
popo520
(2014-5-29 17:18:00)
有一种小型的超滤管(密理博),可以处理500μl到1ml的样品,离心后可以达到浓缩的效果;另外,如果蛋白浓度低,可以做厚一点的胶,比如BIO-RAD的0.75 mm →1.5mm.
standbyme
(2014-5-29 17:18:18)
有一种小型的超滤管(密理博),可以处理500μl到1ml的样品,离心后可以达到浓缩的效果;另外,如果蛋白浓度低,可以做厚一点的胶,比如BIO-RAD的0.75 mm →1.5mm.
zsxan1990
(2014-5-29 17:18:37)
简单点的可以用丙酮沉淀过夜
laughing妹
(2014-5-29 17:18:53)
OD 0.6不低呀,不必浓缩了,电泳操作出问题了吧?
laughing妹
(2014-5-29 17:19:10)
OD 0.6不低呀,不必浓缩了,电泳操作出问题了吧?
nvdabing
(2014-5-29 17:19:28)
浓度大概是1mg/ml吧.我最近正在做着方面的实验呢,大家互相交流吧
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【求助】做WB蛋白浓度低怎么办?
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xyw5 (2014-5-29 17:09:25)
大尾巴 (2014-5-29 17:09:48)
谢谢!
mickeylin (2014-5-29 17:10:05)
好象可以检测到钠克级
建议用发光法显色,较DAB显色提高1000倍灵敏度
cwcwcww (2014-5-29 17:10:22)
最主要是你在提蛋白的时候裂解液可少加点,这样可以提高总蛋白的浓度,OD值在0.6左右太小了,直接会影响到你下一步加样时上样量的大小,要是需要大点的上样量的话,上样孔会负载不了。可用10×buffer的上样缓冲液,可使体积更小点儿。0.2um的PVDF膜可检测到2~5ng(影响中是)的蛋白,但是总蛋白的上样量需要摸索(根据目的蛋白的表达量),楼上战友说得对,用ECL比DAB灵敏的多,如果你的上样量不足,最好还是用ECL检测。
summerxx (2014-5-29 17:10:39)
bangqi_k (2014-5-29 17:10:56)
小野花 (2014-5-29 17:11:12)
除了wgqsdams 的建议之外,还有一个方法,如果上样量太大,一次上不了,可以先上一部分,等跑下去一点之后再加,反正要经过浓缩胶浓缩的,不会有影响。
sunnyB (2014-5-29 17:11:31)
大尾巴 (2014-5-29 17:11:53)
我想每次提完蛋白后就定量,然后将计算好的蛋白量与缓冲液按4:1混合后煮沸,保存,下次做WB时直接拿来就可以了。这样有俩个好处:1避免蛋白降解 2避免每次做蛋白定量损失蛋白。不知这样做是否可以?保存温度?我问师兄师姐有的说可以有的说不行需现用现配,请指教!谢谢!
l另外,10xbuffer是用来做SDS/PAGE的上样缓冲液吗?我知道的10xbuffer是DNA上样缓冲液啊!二者是否可以通用?
祝各位战友一切顺利!
xyw5 (2014-5-29 17:12:29)
蛋白的buffer和DNA的buffer成分不一样,不能互用,10xbuffer只要在5xbuffer的基础上各溶质的量加倍就行了,这样可减少1/2的上样buffer,提高蛋白的上样量。
云端ing (2014-5-29 17:12:51)
上冻干机应该也是一个好方法,现在很多实验室都有的
damingxia0904 (2014-5-29 17:13:08)
请问冻干机能直接干燥液态样品吗?
IAM007 (2014-5-29 17:17:12)
冻干是好方法!我做过培养液中细胞因子的WB,用冻干法效果不错,省得买ELISA盒子了~~:〉
ps:冻干主要用于溶液的浓缩。
abc816 (2014-5-29 17:17:41)
我提个建议,大家看行不行.
用20%的三氯乙酸(TCA)把蛋白沉淀,除去上清,然后加制样buffer,这样也相当于是浓缩了啊.
popo520 (2014-5-29 17:18:00)
有一种小型的超滤管(密理博),可以处理500μl到1ml的样品,离心后可以达到浓缩的效果;另外,如果蛋白浓度低,可以做厚一点的胶,比如BIO-RAD的0.75 mm →1.5mm.
standbyme (2014-5-29 17:18:18)
有一种小型的超滤管(密理博),可以处理500μl到1ml的样品,离心后可以达到浓缩的效果;另外,如果蛋白浓度低,可以做厚一点的胶,比如BIO-RAD的0.75 mm →1.5mm.
zsxan1990 (2014-5-29 17:18:37)
简单点的可以用丙酮沉淀过夜
laughing妹 (2014-5-29 17:18:53)
OD 0.6不低呀,不必浓缩了,电泳操作出问题了吧?
laughing妹 (2014-5-29 17:19:10)
OD 0.6不低呀,不必浓缩了,电泳操作出问题了吧?
nvdabing (2014-5-29 17:19:28)
浓度大概是1mg/ml吧.我最近正在做着方面的实验呢,大家互相交流吧
【求助】做WB蛋白浓度低怎么办?