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字体: 小 中 大 | 打印 发表于: 2015-8-29 17:18 作者: 铜雀 来源: 分析测试百科网
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原帖由 铜雀 于 2015-8-29 17:19 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '') 还想问下,如果枪头上有残留打不出来会有影响吗?如何避免这个问题啊? 如果枪头有残留,当然会影响结果。首先可以考虑换好一点的进口枪头。其次,可以在加样的时候将枪头恰好伸入PCR反应管的液面下一点,然后将液体缓缓打入液面 ...
原帖由 purrr 于 2015-8-29 17:21 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '') 是融化吗?可能会有影响,一定要融化后再吸取稀释
最新回复
www.1 (2015-8-29 17:19:06)
注意事项对会者来说不难,但是对新手来说应该还是挺多的,简单说几条:
1:避免交叉污染——勤换枪头和高压枪头和PCR管。
2:引物设计要正确,选择可靠的生物公司合成引物,如果公司不好,给的引物会不出结果。据说上海生工不错。
3:DNA提取要成功。
4:引物和模板和体系所加的比例要合适,模板过量会抑制体系的反应。
5:跑胶时注意区分开EB污染区和清洁区。
6:吸取试剂前不必每次都混匀,离心是为了把粘在壁上和盖上的试剂离下来。不离也没关系,可以直接用枪头吸。
但是配制的时候需要充分混匀,比如溶解引物,需要先混匀再分装。
还有DNA提取之后最好4度过夜之后再做PCR,这有利于DNA的充分溶解。
铜雀 (2015-8-29 17:19:22)
铜雀 (2015-8-29 17:19:45)
如果枪头有残留,当然会影响结果。首先可以考虑换好一点的进口枪头。其次,可以在加样的时候将枪头恰好伸入PCR反应管的液面下一点,然后将液体缓缓打入液面下,至恰好打出一个小气泡为至。
铜雀 (2015-8-29 17:20:16)
QUOTE:
谢谢,估计换枪头是没有指望的,我试试看你后面教的方法吧!还想问下模板放4摄氏度冰箱可以放多久啊?
铜雀 (2015-8-29 17:20:57)
如果配好的引物没有完全溶解,吸取稀释后会有影响吗?
purrr (2015-8-29 17:21:54)
是融化吗?可能会有影响,一定要融化后再吸取稀释
www.1 (2015-8-29 17:23:42)
QUOTE:
我做过的许多次PCR中,不完全溶解是不影响结果的。不管是buffer还是taq还是引物,
每次我都是看溶够了我用的量就开始吸。
一来能有效保护产品的质量。
二来节约时间。
remonte (2015-8-29 17:26:19)
没试过不完全溶解到底行不行,每次我都害怕结果不好而全溶。
remonte (2015-8-29 17:27:50)
用枪时候一定要按到底吗?我就不全是这样,比如加电泳样品的时候,全打出来反而把气泡也打出来了,只要刚好把样品全打进去即可。不同情况用枪习惯也不同,看情况而定。灵活。。。。。
toy (2015-8-29 17:28:11)
加样过程最好在冰块上操作。
seagate (2015-8-29 18:24:00)
PCR做了很多,根据论坛和自己的经验总结了一下几点,算是抛砖引玉吧,呵呵:
1)PCR实验一定要保管好试剂,防止交叉污染,尤其是ddH2O2的交叉使用,极易引起污染(惨痛的教训)!
2)NA处理最好用硅烷化塑料管以防粘附在管壁上,所有缓冲液吸头、离心管等用前必须高压处理,常规消耗用品用后作一次性处理,避免反复使用造成污染。
3)PCR在超净台内进行,操作前后紫外灯消毒。
4)超净台内设内供PCR用微量离心机、一次性手套、整套移液器和其它必须品;移液品用一次性吸头和活塞的正向排液器,防止移液器基部污染。
5)PCR操作应戴手套并勤于更换。
5)成套试剂,小量分装,专一保存,防止它用。配制试剂用新器具,用后作一次性处理。
6)试剂管用前先瞬时离心(10s),使液体沉于管底,减少污染手套与加样器机会。
7)最后加模板DNA(包括在石蜡油后),马上盖好,混匀,瞬时离心(10s),使水相与有机相分开。加入模板且忌喷雾污染,所有非即用管都应盖严。加模板DNA后应更换手套。
8)引物稀释时,要首先瞬时离心,以避免粉末状引物在开盖时弹出管外。
9)实验设阳性、阴性对照。
【求助】PCR操作过程中有哪些注意事项?