兄弟,酶切位点不会改变的,只不过是在原有引物序列的5‘端加上一段额外序列,P完后用酶切一下不就ok了么?
文献为:
Jannine Brownie, The elimination of primer-dimer accumulation in PCR, Nucleic Acids Research, 1997,25:3235-3241
bring (2015-6-03 15:42:26)
考虑一下用热启动Taq酶吧,我记得好像QIAGEN 和Invitrogen都有一种HotStarTaq DNA polymerase, 该酶在室温时是没有活性的,必须95度15 min进行热激活,这样在热激活的时候使室温配PCR反应体系时引物形成的二聚体解链,接下来直接进入PCR,形成引物二聚体的机会就少多了。值得一试,只是该酶比较贵。
最新回复
woshi (2015-6-03 15:39:08)
不能重新设计就试试降低一下引物浓度,调整一下体系如优化镁离子浓度或改变模板量。除此之外,形成引物二聚物的原因很多,如聚合酶是否活化,还有program,退火温度太高,时间太短,延伸时间太短都可能是原因。
whitesheep (2015-6-03 15:40:48)
dog002 (2015-6-03 15:41:05)
此方法是在设计引物时,在上下游引物的5'端加上序列一样的寡核苷酸尾巴,使得PCR进行到第三个循环时引物二聚体产物会自身退火形成发卡结构而阻碍继续扩增。具体的文献不在手边,有空再替您找找^_^
woshi (2015-6-03 15:41:20)
kulee (2015-6-03 15:42:08)
文献为:
Jannine Brownie, The elimination of primer-dimer accumulation in PCR, Nucleic Acids Research, 1997,25:3235-3241
bring (2015-6-03 15:42:26)
969 (2015-6-03 15:42:49)
QIAGEN的hotstar比较好使,的确挺贵,但是有时候也不是适合所有的反应。
JK.jon (2015-6-03 15:43:05)
JK.jon (2015-6-03 15:48:28)
JK.jon (2015-6-03 15:49:09)
xue258 (2015-6-03 15:49:26)
milkdog (2015-6-03 15:50:39)
此方法是在设计引物时,在上下游引物的5'端加上序列一样的寡核苷酸尾巴,使得PCR进行到第三个循环时引物二聚体产物会自身退火形成发卡结构而阻碍继续扩增。具体的文献不在手边,有空再替您找找^_^
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这不是跟抑制性PCR一个道理吗?
zhy平平 (2015-6-03 15:50:55)
我在做的时侯也遇到同样的问题,最后我提高退火温度,同时减少引物的用量就可以将条带扩增出来了,但是要注意扩增结果,我阔出的结果不是很亮,最后优化Mg2+,酶,多家一些模板就可以了
am10 (2015-6-03 15:51:18)
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你能具体讲解一下什么是热启动,如何操作吗?
remonte (2015-6-03 15:51:35)
qianqin1977 (2015-6-03 15:51:50)
youyou99 (2015-6-03 15:52:25)
提高退火温度
S6044 (2015-6-03 15:53:00)
yizhi (2015-6-03 15:57:32)
考虑一下体系,包括你的引物浓度,dNTP浓度,DNA浓度,Mg++浓度,还有你的Taq酶,因为你问题的确很麻烦,必须好好优化体系,慢慢的一步一步来,不要怕麻烦,OK!
youyou99 (2015-6-03 15:57:50)
我有一个问题:
在进行hotstart的时候,酶是最后才加的,加完了以后还需要混匀吗?
【求助】引物间形成二聚体怎么办?