【求助】提出的蛋白太黏稠如何做?

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【求助】提出的蛋白太黏稠如何做?
小弟提蛋白的时候裂解液加少了,结果刮下蛋白后非常黏稠,有点像鼻涕了:(超声6次后离心14000g 6min,根本没有看见沉淀,就是黏稠一团,吸都吸不开。
请问我这个蛋白还能够做WB么?现在已经放入低温冰箱了,能否在做之前拿出来重新超声10次再离心,最后定量呢?
有没有人可以给予帮助
小弟跪谢先啦
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最新回复

  • wawa (2014-4-13 22:57:56)


    裂解配方是否含有一些必要的成分,比如说去垢剂,盐离子浓度,蛋白酶抑制剂等,MgCl2 CaCl2等
    其他引起粘稠的最主要的原因是核酸和蛋白混在一起,可以试着加点核酸酶,降解掉核酸,释放蛋白。
    不过看楼主的描述,我觉得这个“粘稠的鼻涕”,有点夸张啊,超过俺的想象范围,呵呵
  • wawa (2014-4-13 22:58:14)

    另外如果是做WB的话,给个建议,直接将细胞加了SDSpage的loading buffer,超声一下,然后直接加热,让蛋白都变性,离心后就可以上样跑电泳了
  • dmg (2014-4-13 22:58:50)


    我买的是RIPA裂解液,PMSF的终浓度大于1mM。也不知道是不是由于加少的原因
    楼上所说的是另外一种提取蛋白的方法,但是就我这种情况,应该如何补救呢?
  • wawa (2014-4-13 22:59:13)


    加样品等体积的2X的loading buffer,然后超声,然后煮沸
  • dmg (2014-4-13 22:59:36)


    哦?wawa学长的意思是:下次从冰箱中拿出这次提取的黏稠蛋白,加入上样buffer后再超声?请问这么做的原因是什么呢?如果先超声再离心,然后加上样buffer煮沸与您说的差别在哪里呢?
    谢谢赐教:)
  • zhenxin (2014-4-13 23:00:09)


    正常得蛋白不会有像你所说得那种“鼻涕”,怀疑你提得蛋白是否是“糖”
    造成得原因也不应该是你所说得裂解液+少了造成得
    检查你得试验
    等你的好消息
    good luck!!!!!!
  • dmg (2014-4-13 23:00:32)


    怎么会是糖呢?昨天也用这种同样的试剂和方法提就提得很好。应该是密度大的原因,不过肯定是要试一下的。就是不知道到蛋白定量的时候如果吸不上来应该怎么办了?
  • DNA (2014-4-13 23:00:59)


    会不会是由于裂解液加入的量太少,加上超声波破碎不够,导致核酸没有断裂,与蛋白交缠在一起。
    另外如果要做western-blot,建议加完Loading buffer后,上样前高速离心以下,不然的话可能电泳效果很差,反正如果没有溶解在Loading buffer里的蛋白也不能进胶。
    good luck!
  • dmg (2014-4-13 23:01:18)

    是啊,我觉得是裂解液加入的量太少了,超声了6次,这个应该还是正常。
    请问我在加入loading buffer前还能够超声10次再离心然后定量麽?
  • wawa (2014-4-13 23:01:57)

    QUOTE:

    原帖由 dmg 于 2014-4-13 22:59 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '')

    哦?wawa学长的意思是:下次从冰箱中拿出这次提取的黏稠蛋白,加入上样buffer后再超声?请问这么做的原因是什么呢?如果先超声再离心,然后加上样buffer煮沸与您说的差别在哪里呢?
    谢谢赐教:) ...
    这样也可以
    我觉得实验更多的时候需要自己测试,上面这些战友说的都有一些道理,具体你这个是什么原因,光听你这么简单的说,估计也确定不了,多做几个对照组,看哪个效果最好
  • 松子儿 (2014-4-13 23:02:18)


    你可以用高转速18000转以上大离心机离心15分钟,应该会有胶状或絮状沉淀。还有蛋白浓度高的粘稠状态和菌代谢物的粘稠状态不一样。你自己观察一下。
  • 松子儿 (2014-4-13 23:02:51)

    蛋白浓度高的粘稠不会让你吸不上来。除非里面还有糖之类的代谢物。
  • dmg (2014-4-13 23:03:28)


    请问里面怎么会有糖代谢物呢?这方面我是一点都不懂啊,应该怎么样改善这个情况呢?
  • 分子式 (2014-4-13 23:03:46)


    再加入一倍裂解液。
    或者取出少部分加入一倍裂解液,如果不溶,再加入一倍裂解液,直至溶解,测蛋白浓度。
  • dmg (2014-4-13 23:04:54)


    哦?请问楼上的试过这种方法么?像我现在有絮状物黏稠,是不是按照你这样的稀释能够变清亮呢?
    谢谢
  • tie8 (2014-4-13 23:05:58)


    同意再多加一倍裂解液 可以尝试再次超声
    你的超声是否正确操作了?
    按理说超声本身就能使细胞膜破裂,DNA断裂
    鼻涕状态也就不该存在了
    还有个超笨的方法 如果不是定量研究的话 可以加SDS loading buffer后煮沸 7分钟, 离心取上清,作个上样量的梯度,总有一个浓度合适……
  • dmg (2014-4-13 23:08:03)

    就是把探头插入液面一下,时间定的5秒,间隔3秒,超5-6次
    主要是有时候又正常,有时候又很黏稠,找不到原因也麻烦
  • dmg (2014-4-13 23:08:55)


    采用不同配制比例,终于找到原因了
    1号瓶:98ul RIPA裂解液+2ul PMSF(80mM)配制 加80ul
    2号瓶:98ul RIPA裂解液+2ul PMSF(80mM)配制 加100ul
    3号瓶:98ul RIPA裂解液+2ul PMSF(80mM)配制 加120ul
    4号瓶:98ul RIPA裂解液+2ul PMSF(80mM)配制 加150ul
    5号瓶:90ul RIPA裂解液+10ul PMSF(80mM)配制 加100ul
    超声6次,离心4度 14000g 6min
    结果发现,1-4号瓶都是像以前一样,非常黏稠,而第5瓶则没有这种情况。看来以前是由于PMSF的量不够导致的
    只是不解的是:98ul RIPA裂解液+2ul PMSF(80mM)配制 时,PMSF的终浓度也是大于1mM的,为什么就会出现那种情况呢?
  • wzqzy (2014-4-13 23:09:17)

    我的样品也是这样的,第一次还好,但第二次制备出的样品就很黏稠,我用自己配的extraction buffer成分有:urea,thiourea,CHAPS,DTT,pharmalyte,不知是为什麽?
  • idea2011 (2014-4-13 23:10:44)

    urea,thiourea,CHAPS,DTT,pharmalyte 我今天上午也是用这个提取的蛋白,提了四个样品,结果三个还好 基本不怎么粘稠,第四个粘的跟鼻涕一样啊1不过没有絮状物,我还拿出来玩了一会!大家快点想办法解决一下这个问题啊!我以前基本没遇到过这样的情况啊!
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