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【分享帖】秀出你的western转膜条件
【分享帖】秀出你的western转膜条件
除了抗体原因,转膜是怕是western成败的最关键因素。
看到园子里好多好多人在求助转膜时间,园子为何总结出一系列分子量蛋白转膜的时间呢?少说这对于大多数新手来说,是极好的礼物,说大点,借助丁香园的强势人气,此举可以提高我国一线科研人员WB水平也未必。我认为不用摸转摸条件的话,WB的效率提高数倍不成问题。
请大家多多提供一线转膜经验
也请园子里管事的兄弟姐妹多思量,我希望可以发起一个全园子的征集计划,由本板块版主负责筛选归纳。
[ 本帖最后由 woshiduiyan 于 2013-5-16 17:39 编辑 ]
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最新回复
orangecake (2013-5-16 16:51:43)
对这个方向不大熟悉,但我想应该包括下列几个方面,请战友们费心了,谢谢。
蛋白来源:
蛋白名称(可保密):
蛋白分子量:
WB用膜类型、孔径:
转膜方式(恒压、恒流):
转膜时间:
转膜设备:
转膜液的配制:(如甲醇的比例和是否加SDS以及多大质量浓度等)
图片(可选):
建议改进方向(可选):
zwsyrt (2013-5-16 16:52:02)
蛋白来源: 肌肉细胞膜
蛋白名称(可保密): ***
蛋白分子量: 50--80 kDa
WB用膜类型、孔径: NC膜/PVDF膜(本次试验的结果选用的是NC膜)
转膜方式(恒压、恒流): 半干转 恒流50mA
转膜时间: 70 min
图片(可选):
建议改进方向(可选):
9900 (2013-5-16 16:52:32)
蛋白名称(可保密):一些转录因子
蛋白分子量:40~70KD
WB用膜类型、孔径:0.45 NC
转膜方式(恒压、恒流):湿转 恒流400mA
转膜时间:60~90min
PS.其实吧,以我的经验来看,除非目的蛋白特别小,或者特别大,不然转膜时间真的不是那么重要
曾经因为失误,转了15min就拆下来了,但从丽春红染色来看,跟平常实验也没有太大的区别
one (2013-5-16 16:52:54)
蛋白来源:内皮细胞 总蛋白
蛋白名称(可保密):occludin & AKT
蛋白分子量:65KD & 56KD
WB用膜类型、孔径:0.45 PVDF
转膜方式(恒压、恒流):湿转 恒压 100V
转膜时间:60~70min
同意“ycwzq”所说的“除非目的蛋白特别小,或者特别大,不然转膜时间真的不是那么重要”。
鉴于“wcm123_1980”版主所提的意见,我把目的蛋白名字也秀出来了,设备名字是“Bio-Rad mini”。
2541 (2013-5-16 16:53:30)
蛋白名称(可保密):保密
蛋白分子量:65KD & 55KD
WB用膜类型、孔径:PVDF(预先用甲醇处理)
转膜方式(恒压、恒流):半干转 恒压 12V
转膜时间:30-40min
设备:“Bio-Rad mini”
建议:最开始做过湿转(过夜的那种),太费事费时,效果也不如半干转;
9900 (2013-5-16 16:54:06)
蛋白来源:293T细胞
蛋白名称(可保密):
蛋白分子量:95KD & 35KD
WB用膜类型、孔径:PVDF
转膜方式(恒压、恒流):湿转 恒压 90V-110V,控制电流不要超过300mA。
转膜时间:70min
eric930 (2013-5-16 16:55:00)
相关疾病:
肿瘤
蛋白来源:肿瘤手术标本
蛋白名称(可保密):转录因子
蛋白分子量:33KDa
WB用膜类型、孔径:PVDF膜
转膜方式(恒压、恒流):350mA 恒流
转膜时间:150 min
转膜设备: 湿转 Bio-Rad
说明:相同条件曾用于数个30-70KDa的蛋白,都能成功转上,不过没有试缩短时间效果如何;
实验时没为转膜条件苦恼,倒是电泳时胶的浓度及时间根据不同分子量而有区别。
eric930 (2013-5-16 16:55:30)
蛋白来源:成纤维细胞
蛋白名称(可保密):smad3
蛋白分子量:54KDa
WB用膜类型、孔径:PVDF膜
转膜方式(恒压、恒流):350mA 恒流
转膜时间:150 min
转膜设备: 湿转 Bio-Rad
IAM007 (2013-5-16 16:55:58)
蛋白来源:胰腺癌细胞
蛋白名称(可保密):
蛋白分子量:16KDa and 42KDa
WB用膜类型、孔径:PVDF膜
转膜方式(恒压、恒流):120V 恒压
转膜时间:90 min
转膜设备: 湿转 Bio-Rad
98776langtao (2013-5-16 16:56:20)
蛋白来源:大鼠血管平滑肌细胞
蛋白名称(可保密):保密
蛋白分子量:72KD,42KD 和22KD
WB用膜类型、孔径:一般的PVDF膜
转膜方式(恒压、恒流):湿转,恒流一张膜0.26A,两张膜0.3A. 转膜时间: 90min
设备:“Bio-Rad mini”
建议:转膜缓冲液最多用3次,最好现用现配,我们用的没有加SDS,转的时候最好能用冰块一类的东西降一下温,这样转的效果要好一些,转的时候一定要把三明治每层之间的气泡除去,同时使滤纸大于膜,膜大于胶,以免烧坏电极。
windy+++ (2013-5-16 16:56:41)
蛋白来源:大鼠PBMC
蛋白名称(可保密):保密
蛋白分子量:55KD
WB用膜类型、孔径:0.22的PVDF膜
转膜方式(恒流):湿转,转膜时间: 60-90min
设备:“Bio-Rad mini”
建议:转膜液用过两三次之后转膜效果就很差了 其它按照常规就好了
其实0.22的膜一般不怕转过头 以我们的经验,转膜时间、电压其实
也有很大范围的调整 ,并不是非要固定于哪一个最合适,曾经做过
一张膜转,17KD的和170KD的,按照170KD的条件,17KD的转膜也很好的
(没有过头)
49888 (2013-5-16 16:57:02)
蛋白来源:人非小细胞肺癌细胞系
蛋白名称(可保密):保密
蛋白分子量:大于250kD
WB用膜类型、孔径:millipore PVDF膜 0.45um
转膜方式(恒压、恒流):湿转,恒流0.3A. 转膜时间: 180min
设备:“Bio-Rad ”
建议:电转保持电压在70V以上,保持低温,如果电压低过70就需要换缓冲液了。
附一张图,是用数码相机微距拍的。
26704049.snap.jpg
04906 (2013-5-16 16:57:40)
蛋白名称(可保密):保密
蛋白分子量:28KD
WB用膜类型、孔径:0.45的NC膜
转膜方式(恒流):湿转,90min,0.25A
设备:“Bio-Rad ”
建议:海绵厚度要合适,一次转磨用的海绵太薄,导致三明治没夹紧,转膜后拿出来一看,marker都变得七扭八歪。但是有前辈说垫的海绵太厚可能将胶压断,没经历过,不知道是不是会有这种情况
tianmei001 (2013-5-16 16:58:03)
蛋白来源:肿瘤细胞
蛋白名称(可保密):磷酸化蛋白
蛋白分子量:10-200KDa
WB用膜类型、孔径:millipore PVDF膜 0.45um
转膜方式(恒压、恒流):120v 恒压
转膜时间:120 min
转膜设备: 湿转 Bio-Rad
建议:转膜缓冲液只用2次,基本都转上,5%BSA封闭,减少背景
viviwang1987 (2013-5-16 16:58:34)
蛋白来源:胰腺β细胞
蛋白名称(可保密):******
蛋白分子量:90-130KDa
WB用膜类型、孔径:PVDF膜
转膜方式(恒压、恒流):250mA 恒流
转膜时间:150 min
转膜设备: 湿转
bamboo16 (2013-5-16 16:59:01)
蛋白来源:原核表达
蛋白名称(可保密):保密
蛋白分子量:38KD
WB用膜类型、孔径:0.45 NC
转膜方式(恒压、恒流):湿转 恒压:100V
转膜时间:120min
pengke1983 (2013-5-16 16:59:26)
蛋白名称(可保密):
蛋白分子量:220kDa,130kDa,70kDa,41kDa
WB用膜类型、孔径:PVDF
转膜方式(恒压、恒流):恒压
转膜时间:70v120min,180min,5-6h
转膜设备:伯乐湿转
图片(可选):
建议改进方向(可选):40kDa一下,70v 60-90min足够,40-70kDa 90-120min即可。
70-120kDa 70v120-180min足够,120-180kDa 180-240min,180kDa以上建议6h
u234 (2013-5-16 16:59:58)
蛋白名称(可保密):
蛋白分子量:53KD
WB用膜类型、孔径:PVDF膜 0.45um
转膜方式(恒压、恒流):恒压
转膜时间:80V 100min
转膜设备: 湿转 Bio-Rad
图片(可选):
建议改进方向(可选):
蛋白来源 卵巢癌膜蛋白
蛋白名称(可保密):磷酸化VEGFR
蛋白分子量:230
WB用膜类型、孔径:PVDF膜 0.45um
转膜方式(恒压、恒流):恒压
转膜时间:80V 120min
转膜设备:湿转 Bio-Rad
图片(可选):
建议改进方向(可选):
abc816 (2013-5-16 17:00:33)
蛋白名称(可保密):β-actin
蛋白分子量:42
WB用膜类型、孔径:PVDF膜 0.45um
转膜方式(恒压、恒流):恒压
转膜时间:50 4h
转膜设备:湿转 Bio-Rad
图片(可选):
建议改进方向(可选):
52304592.jpg
PCR (2013-5-16 17:00:57)
【分享帖】秀出你的western转膜条件