【求助】C18柱用稀硫酸清洗

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【求助】C18柱用稀硫酸清洗
本人测定发酵液中的成分,样品处理没有经过严格处理,不干净,造成压力很高。听说0.05M的硫酸可以用来清洗污染的色谱柱,0.05M的硫酸直接进色谱系统会不会腐蚀液相系统的管路,阀门之类的呀?能直接以流动相的形式进入色谱系统吗?冲洗时间一般需要是多少?请高手指点呀!
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最新回复

  • jude (2015-8-26 16:54:47)

    我听说的是硝酸。
  • milkdog (2015-8-26 16:55:06)

    没用过。不怕产生沉淀颗粒?
  • cj_mondy (2015-8-26 16:55:26)

    发酵液带了的柱压高,一般情况都是发酵液中的有机物影响的。用10%异丙醇处理比较好。
  • vcve (2015-8-26 16:57:20)

    要是遇一重金属离子,那可就沉淀了哈
  • youyou99 (2015-8-26 16:58:35)

    那怎么办呀,异丙醇处理过了,没有效果,压力还是挺大的。
  • veiwu (2015-8-26 16:58:51)

    是硝酸还是硫酸啊?第一次听说硫酸哎。
  • bs4665 (2015-8-26 17:00:21)

    《实用色谱技术问答》(中国色谱网组织编写,刘虎威主编 化学工业出版社 2009年1月第一版第一次印刷)

    100页  有这么一段话

    “注意:0.05mol/L的稀硫酸可以用来清洗严重污染的色谱柱。”

    101页  另有

    “如果简单的有机溶剂/水的处理不能完全洗去硅胶表面吸附的杂质,用0.05mol/L的稀硫酸冲洗非常有效。”
  • H2O (2015-8-26 17:02:54)

    后来有用这样用过吗?我也看到这样的清洗方式,不过不敢随意用冲洗,不知道会不会对系统本身有没有影响或者腐蚀之类的。
  • kewanqi2011 (2015-8-26 17:03:28)

    肯定有赛,搞不好你的柱子就报废了,不过实在不行也只有死马当活马医
  • finger (2015-8-26 17:03:54)


    好怕怕啊!一般C18柱耐受pH范围都不能小于2啊,据说是小于2键合相会水解,这0.05M硫酸啊!
  • veiwu (2015-8-26 17:04:16)

    在确定冲洗色谱柱的方法之前,首先要分析一下可能的污染物是什么?盲目套用一些“经典”色谱柱清洗方法,只会浪费时间浪费金钱。
    色谱分析,没有一成不变的使用方法,同样也没有一成不变的的清洗方法。
      
    切入正题:
      
    样品是发酵液,那么,可能会含有蛋白、多肽、多糖等高分子成分(未发酵完全的物质和酵母菌的分泌物、甚至是酵母菌本身等,我不是学生物出身,所以这一点不是非常肯定);对色谱分析来说,特别是反相HPLC,蛋白是很容易吸附在C18上的,导致色谱柱柱头污染,柱压升高,出现肩峰,峰分差等现象……
    冲洗蛋白最好的试剂是TFA,你可以用0.1%TFA水和0.1%TFA MeCN跑梯度:从80:20比例60min到20:80,保持30min,流速1ml/min,然后用H2O:MeCN(95:5)20倍柱体积把TFA清洗干净。
      
    不幸的是,0.1%TFA水溶液的pH<2(大约1.7),所以清洗过程中有可能对普通的色谱柱造成伤害,但并不严重。而且,有些强吸附性蛋白很难从柱头快速通过整个色谱柱而被冲出来。某些公司的色谱柱可以反冲,这些色谱柱直接反冲效果会更好。
      
    所以,最好的办法是避免这种事情发生。可采取的措施,一是在样品前处理上做文章,尽可能除去蛋白等污染物;二是使用保护柱,切记保护柱改换的时候就要换,否则起不到保护作用,并建议实验结束后把保护柱拆下来,分别清洗色谱柱和保护柱(这个你懂的!)。
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