【求助】qPCR如何确保复孔一致性

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【求助】qPCR如何确保复孔一致性

目前正做qpcr,引物特异性没有问题,目前就是副孔,重复ct值相差太大,相求助战友们
就我而言,我现在做的是20ul体系
现配总的混合液,之后每个样品都配混合液,再涡旋5秒钟,枪头吹打5下,之后上样
但是结果还是不能确保,ct值相差非常大
所以,我想知道大家都是怎么混合的?有什么经验方法可以指教下
ps:加样时候是不是必须加到管底?
总结就是:如何混合?如何加样?
不甚感激。。。。
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最新回复

  • vcve (2015-9-04 18:06:59)

    我们加样没有加到管底,最后用离心机离的。
    同一种引物的按量算好和mix一起配的混合液,然后每孔加,最后单独加的cDNA模板。
  • mimili_901 (2015-9-04 18:07:24)

    QUOTE:

    原帖由 vcve 于 2015-9-4 18:06 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '')
    我们加样没有加到管底,最后用离心机离的。
    同一种引物的按量算好和mix一起配的混合液,然后每孔加,最后单独加的cDNA模板。
    谢谢你的回答!
    我很想知道你们没加到管底,离心多久,多大转数?我个人感觉还是会有少数几个孔会有气泡,并且还是在离心后
  • queen (2015-9-04 18:07:40)

    我建议,配总管的时候,是加水,mix和cDNA模板。混匀,每孔加好,最后再加引物的,因为20ul体系中经常只需要1ul的模板,如果是最后每个孔每个孔的加,枪头外带一点点,误差就会大。至于要不要加到管底是无所谓的,一离心就会到管底的。还有气泡的问题,我们知道,PCR开始的时候,温度是升高到95度的,这样的高温,气泡都会破的。
  • vcve (2015-9-04 18:08:02)

    QUOTE:

    原帖由 mimili_901 于 2015-9-4 18:07 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '')

    谢谢你的回答!
    我很想知道你们没加到管底,离心多久,多大转数?我个人感觉还是会有少数几个孔会有气泡,并且还是在离心后
    就离一会,转速不知道是多少呢?我都没有离固定时间的。呵呵
  • mimili_901 (2015-9-04 18:08:42)

    QUOTE:

    原帖由 queen 于 2015-9-4 18:07 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '')
    我建议,配总管的时候,是加水,mix和cDNA模板。混匀,每孔加好,最后再加引物的,因为20ul体系中经常只需要1ul的模板,如果是最后每个孔每个孔的加,枪头外带一点点,误差就会大。至于要不要加到管底是无所谓的,一离心就会到管底的。还 ...
    可是我加入的DNA模版不同,如何配总管啊?相反我的引物是同样的,可是照你的意思,我加入1-2ul 模版应该就会误差很大,如何解决这个问题啊?
    PS:顺便问下阴性对照有结果,怎么办?谢谢啦
  • abc816 (2015-9-04 18:08:58)


    我一般先加模板,然后加引物,最后加mix,每个孔pipette10来次,然后简单转一下,去掉气泡(这步也不是很必要),平行的空,大部分小数点后一位到两位的误差是正常的
  • zhy平平 (2015-9-04 18:09:17)

    我是一个样品配一个总管。阴性对照有结果是不是你有污染或者操作不当?我之前有一次做的时候发现阴性对照的CT值也在30之前,后来发现是仪器的问题,换了台仪器就好了。
  • mimili_901 (2015-9-04 18:09:50)

    我建议,配总管的时候,是加水,mix和cDNA模板。混匀,每孔加好,最后再加引物的,因为20ul体系中经常只需要1ul的模板,如果是最后每个孔每个孔的加,枪头外带一点点,误差就会大。至于要不要加到管底是无所谓的,一离心就会到管底的。还有气泡的问题,我们知道,PCR开始的时候,温度是升高到95度的,这样的高温,气泡都会破的。

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    引物加的更少吧,也就0.4ul,比模板要少,按您的说法“最后每个孔每个孔的加,枪头外带一点点,误差就会大”,就算最后加引物是不是也同样存在误差大的问题呢?如果担心枪头外带一点点误差大的话,可以换枪头吧,不过有点浪费。
  • one (2015-9-04 18:10:09)


    对每一台q-pcr仪做不同的实验,需要试条件,重复多次,达到稳定后才正式实验。这样就好了。
  • 2541 (2015-9-04 18:10:25)

    考虑下是否仪器的问题,之前遇到过,换新仪器就解决了
  • am10 (2015-9-04 18:10:50)


    操作的确的确很关键。还有一个技巧是,提高cDNA的体积。我们做384孔 qPCR总体系10ul,除了mastermix和引物、探针之外(大概7ul),其余全部都加上稀释好的模板。如果你只加1ul的模板,肯定不准确,复孔差异都很大。
  • ero11 (2015-9-04 18:11:12)

    QUOTE:

    原帖由 am10 于 2015-9-4 18:10 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '')

    操作的确的确很关键。还有一个技巧是,提高cDNA的体积。我们做384孔 qPCR总体系10ul,除了mastermix和引物、探针之外(大概7ul),其余全部都加上稀释好的模板。如果你只加1ul的模板,肯定不准确,复孔差异都很大。 ...
    384well?不会眼花?
  • ffaa (2015-9-04 18:11:40)

    We use EPMOTION 5075 for automatically pipetting .


    20702233.jpg

  • summerxx (2015-9-04 18:12:28)

    QUOTE:

    原帖由 ffaa 于 2015-9-4 18:11 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '')
    We use EPMOTION 5075 for automatically pipetting .
    这个绝对是高科技了,我们同样是用384well plate,同样是10ul的体系,可惜只能每次用手加了。
    刚开始做的时候数据确实丑的想撞墙,不过多做几轮后就好多了,我每次3个复孔之间的SD能够控制在0.00x-0.0x之间。
  • ffaa (2015-9-04 18:12:47)

    QUOTE:

    原帖由 summerxx 于 2015-9-4 18:12 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '')

    这个绝对是高科技了,我们同样是用384well plate,同样是10ul的体系,可惜只能每次用手加了。
    刚开始做的时候数据确实丑的想撞墙,不过多做几轮后就好多了,我每次3个复孔之间的SD能够控制在0.00x-0.0x之间。 ...
    怎么叫“丑的想撞墙“?
    建议向楼主谈谈你是怎样有效控制复孔的SD的。
  • cbou876 (2015-9-04 18:13:12)

    QUOTE:

    原帖由 ffaa 于 2015-9-4 18:11 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '')
    We use EPMOTION 5075 for automatically pipetting .
    只能说你们太有钱了。我们96well的都是一个一个加,跟老板说买把排枪,老板说我们不常用,其实天天在做realtime,晕死了。数据有跳动就给脸色看。。。
  • veiwu (2015-9-04 18:13:29)


    排枪没用的,pcr体系都很小,排枪取液时液面不够深,也很难做到均一。
  • shkudo (2015-9-04 18:13:45)


    溶解曲线是这种怎么解释?扩增曲线是S型
  • ha111 (2015-9-04 18:14:13)

    这个绝对是高科技了,我们同样是用384well plate,同样是10ul的体系,可惜只能每次用手加了。
    刚开始做的时候数据确实丑的想撞墙,不过多做几轮后就好多了,我每次3个复孔之间的SD能够控制在0.00x-0.0x之间。

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    这个SD控制不要太好啊!请教怎么做到的,期待大神回复
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