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【求助】胶原酶溶液如何配制
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发表于: 2015-8-11 16:59 作者: 子衿青青 来源: 分析测试百科网
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【求助】胶原酶溶液如何配制
配制1mg/ml的胶原酶溶液是用pbs来配,还是用三蒸水配制,是否可用培养液来配啊
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【求助】胶原酶溶液如何配制
我也来说两句
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66+77
(2015-8-11 16:59:30)
应该用PBS或Hanks来配,胶原酶发挥作用需要离子强度和合适PH值,光用三蒸水配不利于酶的活性,培养液也不太适合。还要将PH值调到7.4左右。
dog002
(2015-8-11 17:00:45)
你可以根据你用胶原酶的目的来配置。如果你是用来消化组织的话你可以用pbs和培养液来配置。一般胶原酶比较合适的ph值在7.3-7.7都可以。浓度你可以配成0.025%,毕竟这是很贵的东东啊!
veiwu
(2015-8-11 17:33:16)
好像文献上都是用的1mg/ml的胶原酶溶液阿,用0.025%的行吗?是不是消化时间要延长阿?
jude
(2015-8-11 17:33:37)
0.1%~0.3%的胶原酶,0.025的浓度太低了。
gmt
(2015-8-11 17:35:24)
可是我用来消化肝细胞效果却很好啊,我想着应该是没有什么问题的。当然树上的确是说的0.1-0.3mg/ml。那就看你用脚远没做什么啦。
qianqin1977
(2015-8-11 17:35:43)
胶原酶应该用D-Hank氏液来配。
不能用三蒸水因为渗透压太低细胞不能耐受,也不能用培养液因为其中的成分复杂对消化有影响,最好也不用Hank氏液因为ca+Mg2+离子易与一些成分结合形成沉淀影响分离(但这是理论上,我曾经试过结果也还不错),PBS文献上没见过,但应该理论上可以用的。
另外常用浓度为0.1%~0.2%,当然还要看你做什么。
JK.jon
(2015-8-11 17:38:45)
配制胶原酶首先要看你的目的是什么,其次要看消化的是什么组织。不同的组织需用不同的浓度,不同的浓度消化时间也不同。而且,每一批胶原酶很可能质量不完全一样,所以效果不稳定。胶原酶绝对不能用三蒸水配,渗透压不对,即使消化下来细胞,可能活力很差,不等贴壁就over了。PBS或培养液均可,我都用过。
shenkunjie
(2015-8-11 17:42:16)
我用来分离干细胞的胶原酶的配制方法是:hepes缓冲液 200ml,胶原酶 0.05g,无水CaCl2 0.15g. hepes缓冲液ph:7.65 37度消化 。效果挺好的
zhy平平
(2015-8-11 17:42:33)
如果是消化软骨,建议采用的浓度为0.2%,用D_Hanks 配。不知道,你消化的是透明软骨还是弹性软骨,或是纤维软骨?
kulee
(2015-8-11 17:45:04)
可是我用来消化肝细胞效果却很好啊,我想着应该是没有什么问题的。当然树上的确是说的0.1-0.3mg/ml。那就看你用脚远没做什么啦。
楼上的朋友,有没有搞错啊,书上说的是0.1-0.3ug/ml,不知道是哪儿出了问题???急啊。
caihong
(2015-8-11 17:46:48)
可是我用来消化肝细胞效果却很好啊,我想着应该是没有什么问题的。当然树上的确是说的0.1-0.3mg/ml。那就看你用脚远没做什么啦。
楼上的朋友,有没有搞错啊,书上说的是0.1-0.3ug/ml,不知道是哪儿出了问题???急啊。
yizhi
(2015-8-11 17:48:26)
抱歉!发之前没有核对一下。很是对不住。我用的胶原酶浓度基本上就是0.25mg/ml.
yizhi
(2015-8-11 17:49:09)
是的,各位大侠,胶原酶4怎么过滤啊,是用多大孔径的,我用的是0.22的,但是五十ML要用差不多两个小时。怎么回事?是滤膜有问题吗?
kulee
(2015-8-11 17:50:06)
相关疾病:
先天性卵巢发育不全综合征
你可以先用0.45的过一遍后,再用0.22的过!
子衿青青
(2015-8-11 17:52:57)
我是用来培养成骨细胞的 ,看文献说是用1mg/ml,不知道可不可以啊
gmt
(2015-8-11 17:54:16)
我见资料上的胶原酶配制是用Hanks,36.5度搅拌溶解2小时,4度过夜。我不明白的是,既然可以36.5度可以溶解2小时,为什么不直接完全溶解,还要4度过夜?
shenkunjie
(2015-8-11 17:55:13)
在从血管消化内皮细胞的过程中,使用的0.2%胶原酶溶液,由培养液配制,含0.1%白蛋白。
百分比
(2015-8-11 17:55:32)
胶原酶浓度:0.1-0.5%
vvmmoy
(2015-8-11 17:56:19)
胶原酶的配制可以用DPBS,PBS,HANKS,1640,基本上都没有什么太大问题,一般消化时间为2-3小时或者4度过夜。我们这儿做原代培养一般是37度2-3小时即可,使用浓度为0.1-0.3%,胶原酶对血清不敏感,因此完全培养基也可以配制消化液。司徒镇强书上说0.1-0.3ug/ml肯定是错了。当然含钙离子的液体更好,消化酶活力更高。
yizhi
(2015-8-11 17:56:39)
消化脑组织或视网膜组织用胶原酶2,一般多少浓度呀?
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66+77 (2015-8-11 16:59:30)
dog002 (2015-8-11 17:00:45)
veiwu (2015-8-11 17:33:16)
好像文献上都是用的1mg/ml的胶原酶溶液阿,用0.025%的行吗?是不是消化时间要延长阿?
jude (2015-8-11 17:33:37)
0.1%~0.3%的胶原酶,0.025的浓度太低了。
gmt (2015-8-11 17:35:24)
可是我用来消化肝细胞效果却很好啊,我想着应该是没有什么问题的。当然树上的确是说的0.1-0.3mg/ml。那就看你用脚远没做什么啦。
qianqin1977 (2015-8-11 17:35:43)
不能用三蒸水因为渗透压太低细胞不能耐受,也不能用培养液因为其中的成分复杂对消化有影响,最好也不用Hank氏液因为ca+Mg2+离子易与一些成分结合形成沉淀影响分离(但这是理论上,我曾经试过结果也还不错),PBS文献上没见过,但应该理论上可以用的。
另外常用浓度为0.1%~0.2%,当然还要看你做什么。
JK.jon (2015-8-11 17:38:45)
shenkunjie (2015-8-11 17:42:16)
zhy平平 (2015-8-11 17:42:33)
如果是消化软骨,建议采用的浓度为0.2%,用D_Hanks 配。不知道,你消化的是透明软骨还是弹性软骨,或是纤维软骨?
kulee (2015-8-11 17:45:04)
可是我用来消化肝细胞效果却很好啊,我想着应该是没有什么问题的。当然树上的确是说的0.1-0.3mg/ml。那就看你用脚远没做什么啦。
楼上的朋友,有没有搞错啊,书上说的是0.1-0.3ug/ml,不知道是哪儿出了问题???急啊。
caihong (2015-8-11 17:46:48)
可是我用来消化肝细胞效果却很好啊,我想着应该是没有什么问题的。当然树上的确是说的0.1-0.3mg/ml。那就看你用脚远没做什么啦。
楼上的朋友,有没有搞错啊,书上说的是0.1-0.3ug/ml,不知道是哪儿出了问题???急啊。
yizhi (2015-8-11 17:48:26)
yizhi (2015-8-11 17:49:09)
是的,各位大侠,胶原酶4怎么过滤啊,是用多大孔径的,我用的是0.22的,但是五十ML要用差不多两个小时。怎么回事?是滤膜有问题吗?
kulee (2015-8-11 17:50:06)
相关疾病:
先天性卵巢发育不全综合征
你可以先用0.45的过一遍后,再用0.22的过!
子衿青青 (2015-8-11 17:52:57)
我是用来培养成骨细胞的 ,看文献说是用1mg/ml,不知道可不可以啊
gmt (2015-8-11 17:54:16)
我见资料上的胶原酶配制是用Hanks,36.5度搅拌溶解2小时,4度过夜。我不明白的是,既然可以36.5度可以溶解2小时,为什么不直接完全溶解,还要4度过夜?
shenkunjie (2015-8-11 17:55:13)
在从血管消化内皮细胞的过程中,使用的0.2%胶原酶溶液,由培养液配制,含0.1%白蛋白。
百分比 (2015-8-11 17:55:32)
胶原酶浓度:0.1-0.5%
vvmmoy (2015-8-11 17:56:19)
胶原酶的配制可以用DPBS,PBS,HANKS,1640,基本上都没有什么太大问题,一般消化时间为2-3小时或者4度过夜。我们这儿做原代培养一般是37度2-3小时即可,使用浓度为0.1-0.3%,胶原酶对血清不敏感,因此完全培养基也可以配制消化液。司徒镇强书上说0.1-0.3ug/ml肯定是错了。当然含钙离子的液体更好,消化酶活力更高。
yizhi (2015-8-11 17:56:39)
消化脑组织或视网膜组织用胶原酶2,一般多少浓度呀?
【求助】胶原酶溶液如何配制