血清中的微小RNAs作为肿瘤标志物的研究进展
微小RNAs(microRNAs,miRNAs)是一类全长为19~25个核糖核苷酸的非编码调控单链小分子RNA,由一段具有发卡环结构的单链RNA前体剪切后生成,通过与目标mRNA 分子的3-端非编码区域(3-UTR)互补配对使目标mRNA分子的翻译受到抑制,从而在转录后对靶基因的表达水平进行调控。根据miRBase数据库现已发现的miRNAs达9500多个,研究证实很多miRNAs与肿瘤的发生发展有关。最近一些研究发现, miRNAs不仅可以在血清中稳定存在,并且许多肿瘤患者血清中的一些miRNAs的表达明显与正常人不同,可以作为一种特异的肿瘤标志物进行测定。
1 血清中miRNAs的稳定性
1.1 血清中存在着大量的miRNAs
随着越来越多的miRNAs功能的发现,许多学者开始关注miRNA在血清中的表达情况。Tsang[1]提出血清中的miRNAs可能与机体某些组织器官的功能减退、缺失有关。但有些人怀疑血清中的miRNAs是否来至其他的小RNA或仅仅是rRNA、mRNA等的裂解片段?Chen等[2]选取21例健康人,其中11例男性,10例女性,同时还入选了:肺癌、直肠癌、糖尿病患者,用Solexa技术对其血清中所有的小于30nt的RNAs进行测序,结果显示不论健康人或患者血清中都存在大量的miRNA,部分mRNA、rRNA及少量未知RNA,证明了血清中确实含有大量的miRNAs,而不是来自其他的转变;并且该试验还发现大鼠、小鼠、牛及其胎儿、马等的血清中也存在大量的miRNAs,这为我们对血清中的miRNAs进行临床疾病研究提供了依据。Gilad等[3]发现利用qRT-PCR技术可以对人体的尿液、唾液、羊水及胸水中的miRNAs进行定量,为我们研究miRNAs开辟了新的途径,这些体液中的miRNAs表达异常可能预示着机体功能的改变,有待进一步研究。
1.2 miRNAs对酶的耐受性
虽然血清中确实含有大量的miRNAs,但是否它们仅仅是一过性的表达,因为血清中含大量的各种消化酶,其中主要是核糖核酸酶。也许不久那些miRNA就会被消化掉,Mitchell等[4]用新杆状线虫miR-39、miR-54、miR-238(在人类中无表达)与人体内生的miR-15b、miR-16、miR-24作对照,结果发现前者加入新鲜的血清中,在不到2min的时间内就很快消失,而后者无明显改变。Chen等[2]通过肺癌患者细胞中的18srRNA、28srRNA、GAPDH、U6等基因、患者细胞中的总RNA、血清中的miRNAs对比,分别给予3h、过夜核糖核酸酶的消化,结果GAPDH、U6等很快消失;肺癌细胞中的RNA约有一半减少,而血清中的miRNAs则无明显改变,可见血清中内生的miRNAs可以逃脱核糖核酸酶的消化。但对于miRNAs逃脱酶消化的机制众说不一,并不清楚。Caby等[5]发现血清中含有大量的膜结合酶微粒;van Niel等[6]提出--血清中的miRNAs先被一种50~90 nm大小的外来体包装,在条件成熟后才被释放出来;Valad等[7]报道膜结合酶中含有miRNAs。可认为血清中的miRNAs是受到一种膜结合酶的保护才免于被消化,但关于他们是怎样结合及哪些因素引起释放,这些过程中miRNAs的功能是否发生变化等问题,还没有合理的解释。
1.3外界条件对miRNAs的影响
虽然血清中的miRNAs可以避免酶的消化,但是如果作为一种有价值的肿瘤标志物、或其他疾病的特异性指标,首先要排除一些外来干扰因素,这些直接关系到它应用于临床的可行性。紧接着有许多研究者对血清中的miRNAs做了进一步的观察,并设计了各种可能影响miRNAs变化的因素,包括:放置时间长短,温度变化、PH值的高低等,结果显示这些均对血清中miRNAs无明显影响,放置时间3、6、24 h,pH=1、pH=13,温度-80℃、0℃或100℃等,血清中的miRNAs均无明显变化[2,4]。由此证明了血清中miRNAs不但可以抵抗酶的消化,而且耐酸耐碱,更不受温度变化及留置时间的影响,比一般的蛋白更适宜作为肿瘤标志物。Chen等[2]为了排除miRNAs在PCR过程中受到DNA、mRNA、rRNA等污染的可能性,他们对miR-21、103、192、24、25等给予两种qRT-PCR扩增测定,一组加入核糖核酸酶,另一组则无核糖核酸酶,结果二者无差异。该实验也证明了血清中miRNAs在个体中的稳定性,未来miRNAs也许可以作为早期诊断和指导个体化治疗的观察指标。
2 肿瘤患者血清中miRNAs的异常表达
既然已经证明血清中miRNAs的非常稳定,很多试验及临床分析也表明miRNAs能够调节癌基因和抑癌基因,从而发挥促癌或抑癌作用。最近许多研究表明miRNAs与肿瘤的分期、转移、药物疗效及预后均有密切的联系。并且很多与肿瘤有关的miRNAs已被证实,如Volinia等[8]报道miR-128b、miR-152、miR-205、miR-222、miR-24、miR-150等在肺癌患者组织中高表达;miR-29a、miR-221、miR-223、miR-25、miR-92、miR-99a等在结直肠癌患者组织中高表达。Wang等[9]发现miR-31在大肠癌中高表达,且与TNM分期、肿块侵润程度均有关(P值分别为 0.026、 0.024),并且发现miR-143仅在结肠癌中低表达P = 0.023,在直肠癌与正常黏膜中无明显差异P=0.351。另外Hiyoshi等[10]报道miR-21在食管癌患者中的高表达与肿块的血管侵犯、淋巴结转移有关。但与肿瘤发生发展相关的miRNA是否在血清中表达呢?表达情况如何呢?Lawrie等[11]对已报道证实的与B型细胞淋巴瘤有关的miR-155、miR-210、miR-21在血清中作了测定:试验选取了60例患者,43例健康人作为对照,在血清中提取miRNA后,用PCR技术扩增后测定,患者血清中的miR-155、miR-210、miR-21表达明显高于对照组,P值分别为:0.009、0.02、0.04。并且还发现miR-21与患者的无病生存率相关(P=0.05),也许某些miRNAs可以作为患者疾病复发的检测指标。
Chen等[2]的研究中发现非小细胞肺癌、直肠癌患者血清中的miRNAs与健康人明显不同,非小细胞肺癌患者与健康人相比:28个miRNAs是缺失的,63个miRNAs是肺癌患者所特有的,(r=0.2 429);69种miRNAs在直肠癌患者血清中高表达,而在正常人中则不表达(r=0.1 588)。而且还发现非小细胞肺癌与直肠癌患者之间含有部分相同的miRNAs,如miR-134、miR-146a、miR-221、miR-222、miR-23a等,认为这部分miRNAs可能参与各种肿瘤的形成,有着共同的致癌机制。关于其作用机制,Stern-Ginossa等[12]认为miRNAs通过与组织相容性复合体Ⅰ类相关链A(MICA)、MICB抗原结合而发挥免疫及炎症反应,miRNAs与MICA、MICB上相应位点结合后,帮助它们逃避来自免疫系统不必要的识别和进攻,并推测肿瘤利用了同样的机制来逃逸免疫检测。Volinia等[13]报道miR-25、miR-223等在肺癌、胃癌、乳腺癌等多种肿瘤中高表达,提出可能是致癌基因;Kumar等[14]在小鼠模型中发现传染let-7g miRNA可以影响细胞周期:G0-G1、 G2-M增多,S期减少;Chen等[2]也在他们的试验中对这3个基因进行了测定:miR-25、miR-223在非小细胞肺癌患者血清中明显高表达,高于正常人,而let-7无明显差异P=0.11,原因可能是肿瘤细胞不分泌let-7。Hunter等[15]比较了血浆微粒中的miRNAs与细胞中的miRNAs区别:发现微粒中有33个miRNAs与细胞中的miRNAs表达明显不同。Chen等[2]同时比较了患者与对照组中无致病性的miRNAs的表达情况,结果差异无统计学意义,说明血清中肿瘤有关的miRNAs不会导致正常的miRNAs发生变化。
Mitchell等[4]发现miRNA-141在25例前列腺癌患者血清中均高表达,可以达到60%的敏感性、100%的特异性,并且与前列腺特异性抗原(PSA)的表达水平有一定的关系。近来Resnick等[16]对卵巢上皮癌患者血清中的miRNAs也进行了测定:28例患者的血清均在治疗前收集,正常未婚者作对照,结果显示:miR-21、miR-92、miR-93、miR-126、miR-29b在患者中明显高表达,而miR-155、miR-127、miR-99b则低表达,并且发现miR-21、miR-92、miR-93在患者CA-125升高以前出现,所以预示着这3种miRNAs可以作为癌基因治疗靶点及卵巢上皮癌早期发现的标志物。Jackson[17]报道血清中的miRNA有望像BCR-ABL、HER2一样应用于临床的靶向药物治疗。各种肿瘤的临床用药均存在不同程度的损伤肝功能的副作用,Wang等[18]在小鼠肝损伤模型中发现一些在肝组织中高表达的miRNAs,如miR-122、miR-192可以在小鼠血清中持续高表达,这些血清中的miRNAs在肝损伤早期就可以检测出来,所以他们提出miR-122、miR-192可以作为药物性肝损伤的早期诊断指标。
3 结语
综上所述, 血清中miRNAs比较稳定,对肿瘤患者诊断具有较好的敏感性及特异性,加上取材的相对无创性,显示出了其作为肿瘤标志物的优势,但距临床应用还有一定距离。寻找和验证各种肿瘤的特异性miRNAs是我们首先需要解决的问题,建立适合临床应用的标准化检测体系,包括质控和诊断阀值的确定等都有待继续努力。再者还有许多miRNAs 的功能有待去探索,包括miRNAs是如何进入到血清中及稳定存在的机制还不清楚。虽然有关血清中的miRNAs研究刚刚开始,但为肿瘤标志物的研究开辟了新的途径,随着研究深入,血清中的miRNAs在肿瘤诊疗中的应用将会取得更多有益于人类健康的新硕果。
【参考文献】
[1] Tsang JC, Lo YM. Circulating nucleic acids in plasma/serum.Pathology,2007,39(2):197-207. PMID: 17454749
[2]Chen X, Ba Y, Ma L, et al. Characterization of miRNAs in serum: a novel class of biomarkers for diagnosis of cancer and other diseases. Cell Res, 2008,18(10):997-1006.PMID:18766170
[3] Gilad S, Meiri E, Yogev Y, et al. Serum MicroRNAs Are Promising Novel Biomarkers. PLoS ONE,2008,3(9): e3148. PMID:18773077
[4] Mitchell PS, Parkin RK, Kroh EM, et al. Circulating microRNAs as stable blood-based markers for cancer detection.Proc Natl Acad Sci USA,2008,105(30):10513-10518. PMID:18663219
[5]Caby MP,Lankar D,Vincendeau-Scherrer C,et al. Exosomal-like vesicles are present in human blood plasma.lnt lmmunol,2005,17(7):879-887. PMID: 15908444
[6]van Niel G,Porto-Carreiro I,Simoes S,et al.Exosomes:A common pathway for a specialized function.J Biochem,2006,140(1):13-21.PMID:16877764
[7]Valad H, Ekstrom K,Bossios A,et al. Exosomal-mediated transfer of mRNAs and microRNAs is a novel mechanism of genetic exchange between cells.Nat Cell Biol,2007,9(6):654-659.PMID:17486113
[8]Volinia S,Calin GA,Liu CG,et al.A microRNA expression signature of human solid tumors defines cancer gene targets.Proc Natl Acad Sci USA,2006,103(7):2257-2261.PMID:16461460
[9] Wang CJ,Zhou ZG,Wang L, et al. Clinicopathological significance of microRNA-31,-143 and -145 expression in colorectal cancer.Dis Markers,2009,26(1):27-34.PMID:19242066
[10]Hiyoshi Y,Kamohara H,Karashima R,et al. MicroRNA-21 Regulates the Proliferation and Invasion in Esophageal Squamous Cell Carcinoma.Clin Cancer Res,2009,15(6):1915-1922.PMID:19276261
[11]Lawrie CH, Gal S, Dunlop HM, et al.Detection of elevated levels of tumourassociated microRNAs in serum of patients with diffuse large B-cell lymphoma.Br J Haematol,2008,141(5): 672-675.PMID:18318758
[12]Stern-Ginossar N,Gur C, Biton M.et al.Human microRNAs regulate stress-induced immune responses mediated by the receptor NKG2D.Immunol,2008,9(9):1065-1073. PMID: 18677316
[13]Volinia S,Calin GA,Liu CG,et al.A microRNA expression signature of human solid tumors defines cancer gene targets.Proc Natl Acad Sci USA,2006,103(7):2257-2261.PMID:16461460
[14]Kumar MS, Erkeland SJ, Pester RE,et al. Suppression of non-small cell lung tumor development by the let-7 microRNA family. Proc Natl Acad Sci U S A,2008,105(10):3903-3908.PMID:18308936
[15]Hunter MP, Ismail N, Zhang X,et al. Detection of microRNA expression in human peripheral blood microvesicles. PLoS ONE, 2008,3(11):e3694. PMID: 19002258
[16]Resnick KE, Alder H, Hagan JP, et al.The detection of differentially expressed microRNA from the serum of orarian cancer pationts using a novel real-time PCR platform.Gynecol Oncol,2009,112(1):55-59.PMID:18954897
[17]Jackson DB. Serum-based microRNAs: are we blinded by potential? Proc Natl Acad Sci U S A, 2009,106(1):E5. PMID: 19106287
[18]Wang K, Zhang S, Marzolf B,et al. Circulating microRNAs, potential biomarkers for drug-induced liver injury. Proc Natl Acad Sci U S A,2009,106(11):4402-7.PMID: 19246379
相关阅读:
- 小鼠血清中砷和硒的微波消解—原子荧光光谱同时测定法 (yty6699, 2009-3-06)
- A FS - 2 2 0 2 原子荧光光度法测定血清中的铅——微量元素与健康研究2002 年第19 卷第3 期 (yty6699, 2009-3-25)
- 血清中硒的原子荧光测定法 (yty6699, 2009-3-29)
- 氢化物———原子荧光法测定人发、血清中的硒 (F20090330, 2009-3-30)
- 火焰原子吸收光谱法直接测定血清中钙铁锌 (F20090330, 2009-4-16)
- 酶法与原子吸收法测定血清钾、钠比对实验研究 (F20090330, 2009-4-21)
- 塞曼石墨炉原子吸收光谱法测定血清铜 (F20090330, 2009-4-23)
- 原子吸收法检测高血压患者血清中金属元素的含量 (F20090330, 2009-4-24)
- 石墨炉原子吸收法测定人发和血清中痕量钼的研究 (F20090330, 2009-4-28)
- 流动注射仪与原子吸收光谱仪联用测定血清铜锌 (F20090330, 2009-4-28)
TAG: 血清