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玉研仪器 动物体温计

参考报价: 面议 型号: 动物体温计
品牌: 玉研仪器 产地: 上海
关注度: 153 信息完整度:
样本: 典型用户: 暂无
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AI问答
可以做哪些实验,检测什么? 可以用哪些耗材和试剂?

数字动物体温计主要用户测量大鼠、小鼠、兔子的体温,选择合适的探头,也可以测量肛温、组织温度、皮肤温度;

有多种型号的温度探头可供选择,敬请来电咨询。




型号:H-100(推荐)

型号:BAT-12


主要特点:

·精度:0.1°C的显示精度,完美的稳定性

·测量范围:-100°C-200°C

·多种探头可选:针状、软光纤、平面、带圆头等适合各种脏器、软组织的探头

·应用:脑温测量、肝温测量、组织液温度测量、各脏器腔内温度测量、肛温测量等

·输出:模拟输出功能;


多种探头可供选择:


RET-3-ISO型小鼠肛温探头

隔离式:热电偶传感器与金属护套电隔离,以减少与其他传器的电干扰


RET-2-ISO型大鼠肛温探头

隔离式:热电偶传感器与金属护套电隔离,以减少与其他传器的电干扰


RET-3型小鼠肛温探头



RET-4型大鼠肛温探头




MT-23型针型探针,适合皮下和组织温度测量



MT-24型纤毛探针,适合脑室温度测量





RET-4型直肠探头

长度91cm(可加长),直径0.8mm,尖端最大 1mm


更多其他探头可选

用来测量皮肤,口腔,组织,直肠的温度



部分温度探头的技术参数:


RET-3

RET-2

适用动物

小鼠

大鼠

探头直径

0.71mm

1.5mm

时间常数

0.5sec

0.8sec

引线长

1.5m

1.5m

热电偶丝及探头材料

铜-康铜不锈钢

铜-康铜不锈钢

探头长度

19.1 mm

25.4mm

准确度

0.1℃

0.1℃

消毒

用气(ETO)或戊二醛

用气(ETO)或戊二醛

最高温度量度

125 °C

125 °C


肛温测量:可以使用润滑油辅助;温度传感器的插入肛门深度不少于全长的3/4



主要特点:

· 触摸模式键具有高度可靠的触觉和音频反馈,可以同时显示温度、时间、日期及连接探头的类型(T,J 或 K);

· 使用四节可更换 7 号电池,恢复供电时不需要重新设置参数;

· 可使用 T 型温度探头,也可以连接 J 型和 K 型温度探头;

· 内置存储器可存储最大和最小测量温度,允许用户存储 50 组数据,为存储的每组读数分配一个查询编号,便于查看;

· 该设备具备 50/60Hz 交流电噪音抑制功能,结合隔离式探头适用于电生理实验;

· 温度测量时可选择摄氏度或华氏度两种温度单位;

· 多个工作模式:测量模式,最大模式,最小模式,保持模式,设置模式和召回模式;

· 也有多个触摸按键:开关机键、保持键,设置键、保存键、左召回键、右清除键、温度单位选择键和最大最小模式键;

· 可用于检测大鼠、小鼠和其他小动物的直肠、口腔、食管或其他身体组织的温度等;



如果待测老鼠数量多,可以根据需要,选择多通道温度测量仪:



主要特点:

·精度:0.1°C的显示精度,完美的稳定性;可在电脑上进行编程;

·同时可以测量1-7只动物

·精确度为±0.1°C

·稳定性为±0.1°C

·分辨率为0.01°C 

·每秒测量16个数值;



根据需求,也可以选择动物体温遥测系统 和 植入式体温胶囊:


动物体温遥测系统

·无线遥测,测量动物的心率、体温、活动量

·植入式E-Mitter转发器没有电池

·长期监测-植入装置允许连续、遥测实验动物一生

·准确、可靠报告清醒无束缚动物的生理和行为数据



植入式体温胶囊

·体积小巧,食用方便,对机体无损害

·实时连续无创监测

·传输参数:传输距离1-3m,传输频率433Hz

·使用寿命:20天

·规格参数:17.7*8.9mm,重1.7g




部分参考文献:
1.Kravchenko JA, Goldberg EM, Mattis J. Optogenetic and chemogenetic manipulation of seizure threshold in mice. STAR Protocols. 2023/03/17/ 2023;4(1):102019.
2.Kawano S, Itoh K, Ishihara Y. Maternal intake of docosahexaenoic acid decreased febrile seizure sensitivity by increasing estrogen synthesis in offspring. Epilepsy & Behavior. 2021/08/01/2021;121:108038.
3.Ganesan V, Sharma A, Tomar S, Schuler CF, Hogan SP. IL-4 receptor alpha signaling alters oral food challenge and immunotherapy outcomes in mice. Journal of Allergy and Clinical Immunology.2023/01/01/ 2023;151(1):182-191.e186.
4.Sarver DC, Xu C, Velez LM, et al. Dysregulated systemic metabolism in a Down syndrome mouse model.Molecular Metabolism. 2023/02/01/ 2023;68:101666.
5.Himmel NJ, Sakurai A, Donaldson KJ, Cox DN. Protocols for measuring cold-evoked neural activity and cold tolerance in Drosophila larvae following fictive cold acclimation. STAR Protocols. 2022/09/16/2022;3(3):101510.
6.Tang J-S, Chiang CY, Dostrovsky JO, Yao D, Sessle BJ. Responses of neurons in rostral ventromedial medulla to nociceptive stimulation of craniofacial region and tail in rats. Brain Research. 2021/09/15/2021;1767:147539.
7.Sprenger RJ, Milsom WK. Respiratory development in burrowing rodents: Effect of perinatal hypercapnia. Respiratory Physiology & Neurobiology. 2021/06/01/ 2021;288:103640.
8.Xiao H, Bozi LHM, Sun Y, et al. Architecture of the outbred brown fat proteome defines regulators of metabolic physiology. Cell. 2022/11/23/ 2022;185(24):4654-4673.e4628.
9.Fischer AW, Jaeckstein MY, Gottschling K, et al. Lysosomal lipoprotein processing in endothelial cells stimulates adipose tissue thermogenic adaptation. Cell Metabolism. 2021/03/02/ 2021;33(3):547-564.e547.




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注:该产品未在中华人民共和国食品药品监督管理部门申请医疗器械注册和备案,不可用于临床诊断或治疗等相关用途

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