玉研仪器 大动物脑立体定位仪

玉研仪器自主研发脑立体定位仪十四年，适用于大鼠、小鼠等实验动物，经典十字操作臂实现精准定位，精度可达10微米，特制螺纹精密螺杆，稳固不晃动实现对特定脑区的精确定位，是神经环路研究、神经系统性疾病、神经药理等领域内的重要研究设备，广泛面向全国各大科研院校,医院,高新企业,药企,医疗机构等科研单位。

由于啮齿类动物与人类之间存在巨大的种属差异，基础研究成果不能有效地转化为临床应用。灵长类动物与人类的亲缘关系最为密切，生理特征也最接近人类，因此灵长类动物研究成果可望直接转化为临床应用。而大动物脑立体定位仪是创建人类神经疾病动物模型的重要基础设备。

大动物脑立体定位仪采用平行滑轨式设计，同样是利用动物颅骨表面的某些解刨标志（如矢状缝，外耳道的中心轴，眶下缘中心部，前卤中心等部位）与脑表面及深部某一结构（如脑核、前连合等）的相对恒定关系，来确定大动物脑内部组织的位置，从而完成相关的实验研究。

脑立体定位仪又称脑固定装置（Stereotaxic Apparatus），它是利用动物颅骨外面的标志或其它参考点所规定的三度坐标系统，来确定皮层下某些神经结构的位置，是神经解剖、神经生理、神经药理和神经外科等领域内的重要研究设备，可用于对神经结构进行定向的注射、刺激、破坏、引导电位等操作，可用于帕金森氏病、癫痫红外脑内肿瘤等动物模型的建立，也可用于学习记忆，脑内神经干细胞移植，脑缺血等方面的研究。

产品特点：

1)功能完整性：平行轨道式大动物定位仪具有标准脑立体定位仪的所有功能，采用三线螺纹定位，定位过程平滑，线性，适用于绝大多数大动物脑部的科学研究。
2)多样化配置：可根据需求的不同进行多种配置，如单臂型，双臂型，四臂型或加装位移传感器的数显型等，最多可以在两个平行轨道上安装六个操作臂，可以实现在一个动物上多个探针独立定位。
3)外接设备的多样性：夹持器部件可外接各种规格的探针、电极固定夹持器，微量注射泵执行单元，颅钻等。
4)操作臂锁定角度的灵活性：在进行大动物脑立体定位操作时，有时会需要从动物的侧面或是下面来进行操作，这时就需要将操作臂倾斜一定角度，可靠灵活的锁定对于这种操作来说至关重要。
5)高精度性：操作臂可以控制左右和上下方向的移动，通过楔形榫头来进行前后控制，位移范围0-80mm，精确度0.1mm；也可配置操作臂前后微调组件（型号：51858），微调范围0-25mm，微调步进0.01mm。
6)独特的旋转固定支架：轨道可以进行360度旋转，适合各种角度的应用；轨道位移范围：-100至100mm，精确度0.1mm。
7)游标卡尺式精度：操作臂上下、左右以及平行轨道均采用游标卡尺读数方式，移 动精度均为100um。
独特设计的适配器滑槽：可选择不同的夹持适配器（如狗猴适配器、猫兔适配器），方便不同体重的大动物头部固定。

锁定可靠

在进行大动物脑立体定位操作时，有时会需要从动物的侧面或是下面来进行操作，这时就需要将操作臂倾斜一定角度，可靠的锁定对于这种操作来说非常的重要。

全方位调节

通过引导螺纹，操作臂可以控制左右和上下方向的移动，前后控制通过楔形榫头来进行，在每个方向上都可以移动80mm。通用关节则使操作者可以在上下或左右平面上，让夹持器的最大转动可达90度。改进型的锁定部件可以让脑立体定位仪锁定在任何角度而不发生滑动，当然也提供了90度垂直方向的绝对锁定。

多功能

其它型号的动物适配器和耳棒都可以用到51800型大动物脑立体定位仪上。

移动平滑

标准型脑立体定位仪采用三线螺纹，可实现很好的位置定位，定位过程平滑，线性。

可选前后微调组件

可选的51858组件，可以25mm范围内，以10微米为步进，前后微调。通过一个伸出的旋纽来控制导轨和操作避的前后移动。

猫/猴脑立体定位仪主要配置：

· 两个51804左边操作臂

· 两个51806右边操作臂

· 一个51801平行导轨框架，12英寸

· 一个51826猫/猴头部固定器带18°耳棒

· 一个51680通用型转动支架

· 底座需另配

51850型狗脑立体定位仪

· 两个51804左边操作臂

· 两个51806右边操作臂

· 一个51851平行导轨框架，14.75英寸

· 一个51852狗头部固定器带18°耳棒

· 一个51680通用型转动支架

· 底座需另配

型号规格：

3. Ali, I., O’Brien, P., Kumar, G., Zheng, T., Jones, N. C., Pinault, D., O’Brien, T. J. (2013). Enduring Effects of Early Life Stress on Firing Patterns of Hippocampal and Thalamocortical Neurons in Rats: Implications for Limbic Epilepsy. PLOS ONE, 8(6), e66962.

5. Bolzoni, F., Bączyk, M., & Jankowska, E. (2013). Subcortical effects of transcranial direct current stimulation (tDCS) in the rat. The Journal of Physiology.

7. Babaei, P., Tehrani, B. S., & Alizadeh, A. (2013). Effect of BDNF and adipose derived stem cells transplantation on cognitive deficit in Alzheimer model of rats. Journal of Behavioral and Brain Science, 3, 156-161.

9. Feng, L., Sametsky, E. A., Gusev, A. G., & Uteshev, V. V. (2012). Responsiveness to nicotine of neurons of the caudal nucleus of the solitary tract correlates with the neuronal projection target. Journal of Neurophysiology, 108(7), 1884-1894.

11. Girardet, C., Bonnet, M. S., Jdir, R., Sadoud, M., Thirion, S., Tardivel, C., Troadec, J. D. (2011). Central inflammation and sickness-like behavior induced by the food contaminant deoxynivalenol: A PGE2-independent mechanism.Toxicological Sciences, 124(1), 179-191.

13. Brooks, S., Jones, L., & Dunnett, S. B. (2010). A29 Frontostriatal pathology in the (C57BL/6J) YAC128 mouse uncovered by the operant delayed alternation task. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A10.

15. Baxa, M., Juhas, S., Pavlok, A., Vodicka, P., Juhasova, J., Hruška-Plocháň, M., Motlik, J. (2010). A26 Transgenic miniature pig as an animal model for Huntington’s disease. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A8-A9.