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重要转基因作物对农田生态系统的影响实验材料与方法

2019.9.11

   1)土壤理化性质及微生物数量测定

    土壤微生物(细菌、真菌和放线菌)数量测定采用稀释平板法;土壤酶活性指标测定参照关松荫(1986)《土壤酶及其研究方法》的方法进行。土壤脲酶活性的测定采用苯酚钠比色法;土壤磷酸酶活性的测定采用磷酸苯二钠比色法;土壤过氧化氢酶活性的测定采用高锰酸钾滴定法;土壤速效磷、硝态氮、铵态氮含量的测定参照鲍士旦(2000)的方法。微生物量碳氮采用氯仿熏蒸-0. 5mol·L-l K2SO4浸提法(Vance et a1.,1987),用总有机碳/总氮分析仪(德国耶拿MULTI N/C 3100)测定土壤微生物量碳(SMBC)、土壤微生物量氮(SMBN)。

    2)根箱设计

    三室根箱装置采用非透明有机玻璃加工而成,长13cm,宽8cm,高12cm,植物生长室宽3cm,两个土壤室宽度均为5cm。植物生长室和两个土壤室之间用30μm孔径的尼龙网相隔,将根系限制在中室内生长,便于将植物根系与土壤分开。这一设计在充分避免根系生长进入相邻土壤室,实现各室间物理分离的同时,又确保了土壤养分及根系分泌物等的室间迁移。试验装置示意图见图1.1。将新鲜土壤自然风干,过1mm筛,装入各根室用作盆栽土壤,每盒装土1.2kg。
三室根箱剖面图

    图1.1 三室根箱剖面图

    3) PCR扩增

    细菌多样性采用细菌16S rDNA V3可变区通用引物34lfGC和534r进行扩增, 引 物 序 列 分别 为 341f-GC  (5'-CGCCCGCCGCGCGCG-GCGGGCGGGGCGGGGGCACGGGGGGCCTACGGGAGGCAGCAG-3 7)釉534r(5'-ATTACCGCGGCTGCTGG-3')( Liu et al.,2009b).357f-GC( 5'-CGCCCGCCGCGCCCCGCG(:CCGTCCCGCC(;CCCCCGCCCG-CCTACGGGAGGCAGCAG-3') 和518r(5'-ATTACCGCGGCTGCTGG-3') (Muyzer et a1.,1993)。PCR的反应体系中0. 5μmol·L-1每种引物,2.5U的Ex Taq DNA聚合酶(TaKaRa),5μL的10×buffer(含MgC12),dNTP200μmol, 50ng的模板DNAo Touchdown PCR反应条件(van Hannen et a1.,1999)为95℃7min; 94℃30s,61℃ 30s(每个循环退火温度降0.5℃),72℃30s,共10个循环;94℃ 30s,56℃30s,72℃ 30s,共25个循环;最后是72℃ 7min。

    固氮细菌nifH基因采用表1.1中的引物进行巢式PCR法扩增。第1轮PCR反应体系:10pmol每种引物,0.5U的Taq DNA聚合酶,2.5μL的10×buff-er(含25mmol·L-l MgCl2),200μmol·L-l dNTP(每种10mmol·L-l),50ng的模板DNA,补灭菌水至25μL。第2轮PCR反应体系:20pmol每种引物,1U的Taq DNA聚合酶,5μL的10×buffer(含25mmol·L-l MgCl2),200μmol·L-l dNTP(每种10mmol·L-l),第1轮PCR产物1μL作为模板,补灭菌水至50μL。反应条件:95℃5min; 94℃1min,55℃1min(第2轮PCR采用48℃),72℃ 1min,30个循环;72℃7mln。

    表1.1用于固氮细菌和氨氧化细菌PCR扩增的引物及其序列

    氨氧化细菌amoA基因采用表1.1中的引物进行PCR扩增。反应体系:20pmol每种引物,IU的Taq DNA polymerase,5μL的10×buffer(含25mmol·L-l MgCl2),200μmol·L-l dNTP(每种10mmol·L-l),100ng的模板DNA,补灭菌水至50μL。进行DGGE的PCR反应条件:95℃ 5min; 94℃1min,65℃→55℃1min(每循环降低0.5℃),72℃ 1min,20个循环;94℃1min,55℃1min,72℃ 1min,15个循环;最后是72℃7min。

    4)变性梯度凝胶电泳

    采用Dcode-rM通用突变检测系统(BioRad,USA)按照操作说明进行变性梯度凝胶电泳( DGGE)分析。电泳结束后,小心取出凝胶,放在SYBRrv Green I(l:10000) (lnvitrogen,USA)染液中染色30min,然后用Gel Dox XR凝胶成像系统( BioRad,USA)观察与拍照。

    5) DGGE条带回收和测序

    选取DGGE图谱中差异条带进行割胶回收,用目的基因引物扩增。PCR产物用Wizard SV Gel and PCR Clean-up System试剂盒(Progema,USA)纯化后与载体pMDrM 19-T Vector(Takara)连接,转化到E.coli JM109中,用菌落PCR方法检测阳性克隆(李正国等,2009),并将阳性克隆子进行测序。

    利用NCBI-BLAST,将测序结果与GenBank数据库进行序列比对分析,获取相近典型菌株的基因序列。然后利用Clustal X l.83和Mega 4.1中的邻接法(neighbor-joining)建立系统发育树。


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