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小 鼠 巨 噬 细 胞 的 表 型 检 测

2019.4.07
实验步骤

基 本 方 案 直 标 法 检 测 小 鼠 巨 噬 细 胞 的 表 型

材料

1554621374251604.jpg

Sorvall RT 6000B 离心机
I . 准 备 4 只 12m m X 75m m 试管,将试管编号为 1〜4。每 管 中 加 入 2 X IO7个细胞/ml细胞悬液 50ul。

2.每管加入 3 mg/ml 阻断 I g G 4ul, 4°C 孵育 lOmin。

3 . 按 表 6. 2. 2 所示 ,在 1 号 和 2 号管中加入适量的生物素偶联的单抗,然 后 将 1 号 、 2号 和 3 号试管冰浴 15 min。

4 . 在 4 号管中加人 5M1 E M A ,混匀。将 试 管 置 白 炽 灯(如 40W 白炽灯)18c m 远 处 ,室 温 lOmin。E M A 只 能 进 入 死 细 胞 。 利 用 死 细 胞 的 强 染 色 性 , 在 F L l 和 F L 3 双 变 量 散 点 图上 可 与 活 细 胞 相 区 分 。

5 . 每管加入 3m lPBS, 1500 g 离 心 3 min。 迅速倒掉上清,试管直立后,手指轻弹管底,使细胞沉淀变松。在 1 号管中加入 F IT C 标记的链亲和素; 2 号管中则加入 T C 标记的链亲和素。然后将 4 只试管冰浴 lOmin, 其 中 3 号管和 4 号管的细胞弹松即可,不需补加液体。

6 . 样 品 含 红 细 胞 时(如新鲜分离的骨髓细胞或脾细胞),每管需加入 3 m l A C K 裂解液;不含红细胞的样品,每管加入 3m l P B S 。

7 . 盖紧试管盖,颠倒试管 1〜2 次 ,混匀细胞后,室温静置 3 min。

8 . 室温, 1500&离 心 4 min,迅速倒掉上清,试管直立后,轻弹管底使细胞沉淀变松。

9 . 加 入 3 ml PBS 洗涤细胞,方法参见步骤 7 和 8 。

10a 直接检测时:加入 20()/^?83,混匀细胞, 4 ℃ 避 光 待 检(可保存<4h)。

IOb 固定后检测时:每管加人 IOOpJ 2 % 甲醛,混匀,加盖, 4°C 避光,固定 Ih 后待检。甲 醛 会 改 变 细 胞 的 光 散 射 值 。

II. 用流式细胞仪进行检测,然 后 用 F A C S c a n 分 析 结 果(第四章)

备 选 方 案 间 标 法 检 测 小 鼠 巨 噬 细 胞 的 表 型

附 加 材 料

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4 . 每管加入 4ul 浓 度 为 3m g /m l 的正常小鼠血清 IgG。冰 浴 lOmin,以阻断二抗上非特异结合位点。

5 . 每管加入适量荧光素标记的抗 F (ab)[片段二抗。混 匀 ,冰 浴 15 min。

6 . 按基本方案步骤 9 洗涤细胞。

7 . 可选操作:细胞不经洗涤,直接在待测管和 A 管中加入适量的第二种荧光素标记的二抗。 B 管中加入等量的荧光素标记的小鼠 IgG, 用以检测步骤 6 的阻断效果。

8 . 余 下 步 骤参见基本方案步骤 9〜11

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