蛋白质浓度测定（双缩脲法）实验介绍
实验原理
测定蛋白质的定量方法有很多，目前常用的有凯氏定氮法；比色法主要包括双缩脲法、Folin-酚试剂法及 染料结合法；紫外分光光度法等
双缩脲(Biuret)法：在碱性溶液中，双缩脲(H2N—CO—NH—CO—NH2)与二价铜离子作用形成紫红色的络合物，这一反应称双缩脲反应。凡分子中含二个或二个以上酰胺基(—CO—NH2)，或与此相似的基团[如—CH2—NH2，—CS—NH2，—C(NH)NH2]的任何化合物，无论这类基团直接相连还是通过一个碳或氮原子间接相连，均可发生上述反应。蛋白质分子含有众多肽键(—CO—NH—)，可发生双缩脲反应，且呈色强度在一定浓度范围内与肽键数量即与蛋白质含量成正比，可用比色法测定蛋白含量。与同样处理的蛋白标准液比较，经计算或查标准曲线即可求出血清总蛋白质含量。
实验试剂
1．6mol/L氢氧化钠溶液
称取氢氧化钠(NaOH，优级纯)240g，用新鲜蒸馏水配制成1L，置室温贮存在密封的聚乙烯瓶里。
2．双缩脲试剂
称取未失结晶水的硫酸铜(CuSQ·5H20) 3.0g，溶于500m1新鲜蒸馏水中，加酒石酸钾钠(NaKC4H4O6.4H2O)9.0g，碘化钾(KI)5.0g，待安全
溶解后，加入6mol/L氢氧化钠溶液100ml，zui后加蒸馏水至1L。室温贮存在密闭的聚乙烯瓶里，约稳定6个月。
3．蛋白标准液
可用商品血清蛋白标准液或定值质控血清为标准。亦可收集混合新鲜血清，用凯氏定氮法标定后，加叠氮钠防腐(叠氮钠的终浓0.5~1.0g/L)，冰冻
保存。
实验设备
恒温水浴箱、722（721）分光光度计、吸管、试管、坐标纸
实验步骤
1. 配制20g／L蛋白标准液 如蛋白标准液浓度为70g／L，则取此液2m1，加入新鲜蒸馏水5ml，混匀即成。
2. 按表操作
加入物（ml） 空白管 1 2 3 4 5 测定管
20g/L蛋白标准液 ～ 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 ～
蒸馏水 0.5 0.4 0.3 0.2 0.1 ～ 0.4
待测样品液体 ～ ～ ～ ～ ～ ～ 0.1
双缩脲试剂 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0
相当血液蛋白质（g/L） ～ 20 40 60 80 100
混匀，置37℃水浴10min(或25℃30min)，用540nm波长比色，以空白管调零，读取各管吸光度。
3. 标准曲线绘制
1—5为标准曲线管，测得吸光度后，以吸光度为纵坐标，蛋白质浓度为横坐标绘制标准曲线。
4. 实验结果
根据测定管吸光度，从标准曲线查找相对应的总蛋白浓度。
注意事项
1．双缩脲试剂中，加入酒石酸钾钠，Cu2 形成稳定的络合铜离子，以防止CuSO4·5H20不稳定形成Cu(OH)2沉淀。酒石酸钾钠与CuSO4·5H20之比
不低于3：1，加入KI作为抗氧化试剂。
2．双缩脲试剂要封闭贮存．防止吸收空气中的二氧化碳。
3．本法各种蛋白质的显色程度基本相同，重复性好，几乎不受温度影响，*缺点是灵敏度较低。
4．黄疸血清．严重溶血对本法有明显干扰。
5．本法绘制的标准曲线是一条通过原点的直线，在100g/L浓度之内呈良好的线性关系。
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