慢病毒用于体外（in vitro）实验：感染培养原代细胞和...
慢病毒用于体外（in vitro）实验：感染培养原代细胞和建系细胞
1.
慢病毒对各种细胞和组织的亲嗜性不同，用户使用Invabio提供的慢病毒之前可以通过查阅相关文献，了解慢病毒对您的目的细胞的亲嗜性，感染复数（MOI
值）以及在体内（in vivo）注射所需要的病毒量。如果没有相关文献支持，可以通过感染预实验得到合适的感染复数（MOI
值）（使用24孔板检测病毒对目的细胞的亲嗜性）
2. 慢病毒感染目的细胞预实验
① 慢病毒感染目的细胞预实验注意事项
A． 测定慢病毒对目的细胞的亲嗜性时，需要同时设置对慢病毒亲嗜性较高的（HEK293T，Hela） 细胞作为平行实验的对照细胞。
B．在进行慢病毒感染实验时,可以用完全培养基（培养目的细胞用）稀释；理论上，含有血清、双抗或者其他营养因子的完全培养基不影响慢病毒的感染效率。
C．Invabio提供的病毒单位为TU/ml，即每毫升中含有具有生物活性的病毒颗粒数。如：病毒滴度为>1X108 TU/ml 即每毫升病毒液中至少含有1X108个具有生物活性的慢病毒颗粒。
② 以24孔培养板为例，进行目的细胞和HEK293T 细胞的感染预实验
实验前按照不同的MOI设置不同的感染孔，并根据MOI和细胞数量计算所需要的病毒量，如有必要可以使用PBS溶液或者无血清培养基稀释病毒原液
第一天，准备细胞：在24孔培养板接种若干孔，每个孔内接种3~5X104个目的细胞，铺板时细胞的融合率为50%左右，每孔培养基体积为100 μl；进行病毒感染时细胞的融合度约为70%左右。
第二天，观察细胞生长状态，如细胞状态较好则开始实验：
1、取出4℃保存的病毒，使用台式离心机离心20 秒（使病毒完全悬于离心管底部即可）；如果是冻存在-80℃的病毒需要先在冰上融化后使用。亦可以根据实验室的实际情况将按照MOI 准确计算好的慢病毒稀释到培养基中，并尽可能保证所获得的含有慢病毒的培养基的总体积为最小体积，以期获得最佳的感染效率。
2、病毒准备好之后，从培养箱中拿出细胞，
a 使用移液器吸取准确体积的病毒液加入准备好的培养基
b 吸去原细胞培养器皿中的培养基（如果细胞生长良好，密度适宜，则不用换液）
c 在目的细胞和对照细胞中分别加入计算好的病毒液
d 混匀后放于二氧化碳培养箱（37℃、5%CO2）孵育过夜
注：感染前细胞的状态好坏对最终的感染效果高低影响很大，所以务必保证加病毒之前，细胞处于良好的生长状态。
如果慢病毒对目的细胞的感染效率偏低，则可以通过提高MOI 值来增加其感染效率，但是当MOI 高于20 时，我们建议客户在培养基中加入ploybrene（8 μg/ml左右）来提高病毒的感染效率。
第三天，更换培养液：一般在24小时候后将含有慢病毒的培养液更换成正常培养液；在感染后观察细胞状态，如果慢病毒对细胞有明显毒性作用而影响细胞生长状态，可以最短在加病毒4小时候更换新鲜培养液后继续培养（建议在8-12小时更换为宜）。第一次换液后，如果慢病毒对细胞没有明显毒性作用，按照正常培养条件培养换液。
第六天，感染效率检测：在倒置荧光显微镜观察荧光，估计慢病毒感染目的细胞的效率；如何由于目的基因较大而造成选择的载体不能携带Marker Gene的，可以通Real-time RT-PCR检测目的基因的表达来拍评估感染效率。
