蛋白质的抽提实验——超声波破碎法
蛋白质的抽提实验是进行蛋白质实验分析的基本操作,可用于(1)蛋白质的分离(2)蛋白质功能结构检测(3)蛋白质表达前的基本操作。
实验方法原理 | 蛋白质在细菌中表现后,以反复的冷冻-解冻方法打破细胞,再用硫酸铵把蛋白质沉淀下来,此步骤可以去除大部份核酸、多醣、脂质等杂物。 |
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实验材料 | |
试剂、试剂盒 | |
仪器、耗材 | |
实验步骤 | 1. 挑取培养皿上单一菌落,培养在15 mL 的LB/amp/kan 液体培养基中,以120 rpm 转速震荡,在37℃下培养过夜。 2. 取上述菌液6 mL加入300 mL新鲜LB/amp/kan培养基中,以120 rpm 37℃培养至A600 = 0.6 后,加入IPTG成为1 mM浓度,继续以120 rpm在37℃震荡培养4 h。 3. 将菌液倒入50 mL 离心管 (conical tube) 中离心10 min (5 000 rpm)。 4. 倒去上清,可将菌块连同离心管置 -20℃冰箱贮存。 5. 取出含菌块的离心管置碎冰上,待菌块溶解后,以残存液体均匀悬浊的。再加入10 mL lysis buffer 轻轻悬浮的。 6. 将菌液放在液态氮中冷冻1 min,然后在37℃水浴中摇荡溶解的。如此反复三次,尽量不要产生大量气泡。将离心管的内容物倒入50 mL 高速离心机的离心管内。 7. 离心20 min (12 000 rpm,4℃) 取上清共 _____ mL,称为 粗抽取液 (XT);预留100 μL 以便日后一起进行分析。此后样本均得放置碎冰上,以低温进行实验。 8. 此上清加入5 mL buffer A-0 混匀后倒入烧杯,置碎冰上放冷,不时搅拌并缓缓加入固体硫酸铵 _____ gm,使成为70%饱和度,加完后再搅拌10 min。 9. 离心20 min (12 000 rpm,4℃) 后小心倒去上清,取白色沉淀部份。 10. 沉淀加以2 mL buffer A-150 均匀悬浊的,再以桌上型离心机去除不溶物质,(10 000 rpm,5 min),共得 ______ mL,称为 全蛋白质 (TP);预留100 uL,连同上述XT 置4℃冷藏。 11. 其余溶液部份准备进行胶体过滤层析,标示清楚后置4℃冷藏。 展开 |
注意事项 | 1. 操作时总是小体积小量的操作,避免污染,并且动作要快。 2. 蛋白酶普遍存在,在提取蛋白质的步骤中,早些抑制,经常抑制。 3. 分装蛋白溶液,储存于不同的温度和不同的缓冲液中,测蛋白活性,找出最适储存条件。 4. 冷藏,并加入稳定剂。这些稳定剂一般都能充分保持蛋白的生物学活性。 5. 避免酶的反复冻融,如果酶需要冻存,分装成小管后冻存。 展开 |
其他 |
1、仪器用具 2、药品试剂 β-mercaptoethanol,25 ug/mL PMSF,40 ug/mL lysozyme.Buffer A-0 (50 mM Na3PO4, pH7.0) 使用前每1 L 添加70 μL β-mercaptoethanol 成为10 mM 最终浓度。Buffer A-150: Buffer A-0 再加有0.15 M NaCl;硫酸铵(要烘干并以研砵磨碎)。 3、蛋白质的储存:
(2)整个实验过程中,都要将蛋白样品置于冰上。 (3)从母管中吸取不同的蛋白时,都要用新鲜的枪头。 (4)不要将未用的溶液倒回母管。 (5)戴手套操作,避免蛋白交叉污染,或是蛋白酶的污染。 (6)避免剧烈的震荡,避免溶液中混入蛋白变性剂。 (7)实验的过程中应避免灰尘进入,灰尘包含60%的肌氨酸。 展开 |