动脉血压的直接测定及影响因素
实验概要
学习记录哺乳动物动脉血压的直接测定方法，并观察神经-体液因素对心血管活动的调节。
实验原理
在正常生理情况下，心血管活动受神经、体液和自身机制的调节。
心脏受交感神经和副交感神经的支配。心交感神经兴奋时，使心率加快、心肌收缩力加强，心内兴奋传导加快，心输出量增加、动脉血压升高。心迷走神经兴奋时，使心率减慢、心房肌收缩力减弱、房室传导减慢，从而使心输出量减少、动脉血压下降。在神经调节中以颈动脉窦-主动脉弓的减压反射尤为重要，当动脉血压升高时,压力感受器发放冲动增加,通过中枢反射性引起心率减慢、心肌收缩力减弱、心输出量下降、血管舒张和外周阻力降低，使血压降低。反之，当动脉压下降时，压力感受器发放冲动减少，神经调节过程又使血压回升。支配血管的交感缩血管神经兴奋时，使血管收缩、外周阻力增加、动脉血压升高。
家兔的压力感受器的传入神经在颈部从迷走神经分出,自成一支，称为减压神经，其传入冲动随血压变化而变化。
心血管活动还受肾上腺素和去甲肾上腺素等体液因素的调节。它们对心血管的作用既有共性，又有特殊性。关键取决于心、血管壁上哪一种受体占优势。肾上腺素对α与β受体均有激活作用，去甲肾上腺素主要激活α受体而对β受体作用很小，因而使外周阻力增加，动脉血压升高，但对心脏的作用要比肾上腺素弱。
主要试剂
生理盐水，肝素（500 U•ml-1），1: 10000肾上腺素。
主要设备
计算机生物信号采集处理系统，兔手术台，手术器械一套，动脉夹，动脉套管、血压换能器，保护电极，棉线，纱布，棉球、注射器。
实验材料
家兔。
实验步骤
1.实验准备：
（1）麻醉和固定：
麻醉家兔，当动物四肢松软，呼吸变深变慢，角膜反射迟钝时，表明动物已被麻醉，即可停止注射。将麻醉的家兔仰卧位固定于兔手术台上。
（2）分离颈部神经、血管
颈部剪毛，沿颈部正中线切开皮肤5～7 cm，用止血钳钝性分离皮下组织及浅层肌肉，暴露和分离气管；分离左、右两侧颈总动脉（左颈总动脉尽量分离长些，以做动脉插管用）；分离右侧的迷走神经、交感神经和减压神经。在分离的颈总动脉及神经下方各穿一的线备用。并在减压神经下放一钩状记录电极，实验过程中将电极悬空（但不要拉得过紧）。
（3）插动脉插管：
在左侧颈总动脉插入动脉插管。
2．连接实验装置：
（1）计算机生物信号采集处理系统 将动脉插管通过三通与血压换能器连接，血压换能器与计算机生物信号采集处理系统的压力通道连接；刺激电极与系统的刺激输出连接。 启动计算机生物信号采集处理分析系统，按系统程序提示进行血压信号定标，调整放大增益。
3.实验项目
（1）记录正常情况下减压神经放电波形和动脉血压波形，观察二者变化关系，同时辨认血压波的一级波和二级波，三级波：
一级波（心搏波），由心室舒缩活动所引起的血压波动，心缩时上升，心舒时下降，其频率与心率一致。二级波（呼吸波），由呼吸运动所引起的血压波动，吸气时血压先下降，继而上升，呼气时血压先上升，继而下降，其频率与呼吸频率一致。三级波，不常出现，可能由心血管中枢的紧张性活动的周期变化所致。
（2）夹闭颈总动脉
用动脉夹夹闭右侧颈总动脉10～15 s，观察血压与减压神经放电的变化。
（3）牵拉颈总动脉
手持左侧颈总动脉上的远心端结扎线，向心脏方快速牵拉3 s观察血压与减压神经放电的变化。
（4）静脉注射肾上腺素
待血压基本稳定后，由耳缘静脉注入1:10000去甲肾上腺素0.2～0.3 ml，观测血压与减压神经放电的变化。
（5）刺激迷走神经外周端
待血压基本稳定后，结扎并剪断右侧迷走神经，电刺激迷走神经外周端，观察血压和心率的变化。待血压变化明显时停止刺激。
（6）抬高动物后肢
观察血压的变化。
注意事项
（1）本实验麻醉应适量，麻醉药注射速度要慢，同时注意呼吸变化，以免过量引起动物死亡。如果实验时间过长，动物苏醒挣扎，可适量补充麻醉药物。
（2）每观察一个项目，必须待血压和心率恢复正常后，才能进行下一个项目。
（3）每次静脉注射完药物后应立即推注0.5 ml生理盐水，以防止药液残留在针头内及局部静脉中而影响下一种药物的效应
（4）实验中注射药物较多，要注意保护耳缘静脉。
（5）实验结束后，必须结扎颈总动脉近心端后再拔除动脉插管。
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项目成果
