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致泻大肠埃希氏菌鉴定剂盒(pcr法)使用说明

2020.8.25

  致病微生物系列

  致泻大肠埃希氏菌鉴定剂盒(PCR法)

  产品说明

  致泻大肠埃希氏菌鉴定剂盒参照《GB4789.6—2016 食品安全国家标准 食品微生物学检验 致泻大肠埃希氏菌检验》进行设计,可针对食品样品中的致泻大肠埃希氏菌特异核酸片段进行扩增,通过电泳判断样品的鉴定结果。该产品检出限为10^3 cfu/ml(使用旋达071021M细菌基因组DNA提取试剂盒提取1 ml 10^3cfu/ml增菌液的细菌基因组DNA作为模板)。

  一管式检测试剂为本公司研发的产品,与传统PCR法检测试剂具有等效的检测性能,其中的固封液不影响检测反应与荧光检测性能,并且对试剂蒸发与气溶胶污染起到一定的防范作用。该产品无需分装试剂,有效减少反复冻融及分装过程中造成的试剂活性下降及试剂污染,无需增设试剂配置区,省时省力省空间。(该产品反应液中已含荧光染料,可直接使用荧光定量PCR仪进行定性检测)

  ◆ 产品组成(96测试)

  试剂

  含量

  作用

  孔1

  反应液-uidA

  23μl/孔

  12孔/排

  8排

  (本产品使用12联PCR管分装,每排含12种反应液各23ul)

  内参

  孔2

  反应液-ipaH

  鉴定EIEC

  孔3

  反应液-pic

  鉴定EAEC

  孔4

  反应液-aggR

  鉴定EAEC

  孔5

  反应液-astA

  鉴定EAEC

  孔6

  反应液-stx1

  鉴定EPEC与EHEC

  孔7

  反应液-stx2

  鉴定EPEC与EHEC

  孔8

  反应液-bfpB

  鉴定EPEC与EHEC

  孔9

  反应液-escVa

  鉴定EPEC与EHEC

  孔10

  反应液-lt

  鉴定ETEC

  孔11

  反应液-stp

  鉴定ETEC

  孔12

  反应液-sth

  鉴定ETEC

  NG-Ecoli

   100μL × 1支

  阴性对照

  NG-DW

   100μL × 1支

  空白对照

  PG-Ecoli

   100μL × 1支

  阳性对照

  Loading Buffer

   600μL×1支

  电泳上样缓冲液

  ◆ 所需仪器

  ABI ,BioRad,TaKaRa等PCR扩增仪,电泳仪,凝胶成像仪等电泳配套设备。(使用荧光定量PCR仪进行定性判读时则无需电泳设备)

  ◆ 自备耗材和仪器

  ①灭菌1.5mL或2.0mL离心管;②冰盒;③移液器(1-10μL,10-100μL,100-1000μL)及配套灭菌吸头;④离心机;⑤涡旋混匀器;⑥金属浴。

  ◆ 样品处理

  参照《GB4789.6—2016 食品安全国家标准 食品微生物学检验 致泻大肠埃希氏菌检验》中的操作步骤进行前增菌。建议使用试剂配套细菌基因组DNA提取系列产品。

  ◆ 实验操作

  1.添加模板(样本制备区,放置于冰盒中进行)

  取所待检样品数+3的12联反应管,将试剂完全解冻,分离心30s。离心后揭开封口膜,使用穿刺加样法穿过固封层向每管反应液中分别加入2μL模板(或直接使用无菌吸头挑取少许待检菌落至反应管中)。

  加样示例:(有2个待测样品)

  取5排12联反应管,按顺序第一排全部加NG-DW,第二排全部加NG-Ecoli,第三排全部加样品1,第四排全部加样品2,第五排全部加PG-Ecoli。

  盖好配套的PCR管盖后,涡旋混匀30s,离心1min,立即进行PCR扩增反应。

  2. 扩增反应(扩增及产物分析区)

   按下列条件设置扩增反应:(如需使用荧光法进行检测请选择FAM通道)

  PCR循环

  荧光收集位点

   95℃

  10分钟

  1个循环

  —

   95℃

  30秒

  30个循环

  —

   63℃

  30秒

  —

   72℃

  90秒

  ※

   72℃

  5分钟

  1个循环

  —

  3. 产物电泳(扩增及产物分析区)

  称量4. 0g琼脂糖粉,加入至200 mL的1×TAE电泳缓冲液中,充分混匀。使用微波炉反复加热至沸腾,直到琼脂糖粉完全融化形成清亮透明的溶液。待琼脂糖溶液冷却至60℃左右时,加入溴化乙锭( EB )至终浓度为0.5μg/mL,充分混匀后,轻轻倒入已放置好梳子的模具中,凝胶长度要大于10cm,厚度宜为3mm~5mm。检查梳齿下或梳齿间有无气泡,用一次性吸头小心排掉琼脂糖凝胶中的气泡。当琼脂糖凝胶完全凝结硬化后,轻轻拔出梳子,小心将胶块和胶床放入电泳槽中,样品孔放置在阴极端。向电泳槽中加入1×TAE电泳缓冲液,液面高于胶面1mm~2mm。将 5μL PCR产物与1μL 6×上样缓冲液混匀后,用微量移液器吸取混合液垂直伸入液面下胶孔,小心上样于孔中;阳性对照的 PCR 反应产物加入到最后一个泳道;第一个泳道中加入 2 μ L 分子量 Marker 。接通电泳仪电源,根据公式:电压=电泳槽正负极间的距离(cm)×5V/cm计算并设定电泳仪电压数值;启动电压开关,电泳开始以正负极铂金丝出现气泡为准。电泳30min~45min后,切断电源。取出凝胶放入凝胶成像仪中观察结果,拍照并记录数据。

  可使用Gold view、Gal-Rad等等效的核酸荧光染料替代EB。

  推荐使用DNA Marker:DL2000或100bp ladder,等可指示100bp~1500bp条带的Marker。

  结果分析

  阴阳性判读:

  进行电泳检测时,需对比Marker进行判断,当目的靶标对应位置出现单一显著条带时可判断该靶标为阳性;否则为该靶标检测为阴性。(使用荧光定量PCR仪检测时,检测孔Ct≤30时判断该孔为阳性;当检测孔Ct>30时,该检测孔为阴性)

  示例电泳图

  有效性判读:

  需同时满足:1.空白对照中所有泳道均为阴性;2.阴性对照中uidA泳道阳性,其余泳道阴性;2.阳性对照中所有泳道阳性,此时可判断实验有效。如无法满足上述条件,则实验无效,需重复实验;如重复后结果仍为无效,请于本公司技术支持联系。

  结果判读:

  在实验有效的情况下,可根据下表进行判读:

  致泻大肠埃希氏菌类别

  目标条带的种类组合

  EIEC

  ipaH(+)

  uidA

  (+/-)

  EAEC

  aggR,astA,pic中一条或一条以上阳性

  EPEC

  bfpB(+/-),eae(+),stx1(-)stx2,(-)

  STEC/EHEC

  stx1,stx2中一条或一条以上阳性,eae(+/-),bfpB(-)

  ETEC

  lt,stp,sth中一条或以上阳性

  97%以上大肠埃希氏菌为uidA阳性,可参考阴性对照中该基因检测结果判断扩增效果;

  当结果判定为EPEC阳性时,若bfpB靶标为阳性则说明样品含有典型EPEC;若bfpB靶标为阴性则说明样品为非典型EPEC;

  当结果判定为STEC/EHEC阳性时,若eae靶标为阳性则说明样品含有典型EHEC;若eae靶标为阴性则说明样品为非典型EHEC。

  ◆ 注意事项

  1.本试剂检测灵敏度高。为了防止污染,实验要分区操作。

   1)第一区:样本制备区。

   2)第二区:扩增及产物分析区。

   ★ 分区之间最好进行物理性隔离,避免人为因素造成的污染。

  2. 实验过程中穿戴工作服和乳胶手套,使用移液器,试验产生的所有废弃物及时处理。

  3.严格按照操作步骤操作,试剂配制和加样等步骤请严格按照说明书要求在冰上操作。

  4.反应液中的成分对光敏感,应避光保存。试剂使用前要完全解冻,但应避免反复冻融,推荐使用前离心30秒。

  5.不同批号试剂请勿混合使用,在有效期内使用。


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