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痘苗病毒系统基因表达实验

2019.9.12

  • 重组痘苗病毒(VTF7-3)感染后的脂质体转染

  • 两种重组痘苗病毒共感染细胞

           

实验方法原理 本方案从构建外源基因位于 PT7 和 T7 终止子之间的质粒载体开始,然后用重组质粒通过脂质体介导转染已经被vTF7-3(可以持续表达T7 RNA聚合酶的痘苗病毒)感染的细胞。收获后,基因产物在细胞内的表达可以用脉冲标记的方法或用「重组痘苗病毒及其产物的鉴定实验」中叙述的方法分析鉴定。
实验材料

脂质体悬液 vTF7-3 痘苗病毒储液 生长至汇片的 CV-1 细胞 重组质粒

试剂、试剂盒

低血清 Opti-MEMI 培养基 完全 DMEM-10 培养基

仪器、耗材

6 孔组织培养板 杯状超声仪 聚苯乙烯管

实验步骤

1. 用 CsCl/溴化乙锭离心或 PEG 沉淀纯化重组质粒,每孔细胞需要 5 μg DNA 进行转染。


如果使用 pTM1 质粒(图 16.16.2), 必须保证目的基因起始 ATG 位于 pTM1 的 NcoI 位点。可以通过限制酶作图或 DNA 测序鉴定构建是否正确。


2. 在病毒感染前一天,用完全 MEM-10 培养基将 5×105 CV-1 细胞/孔加入 6 孔组织培养板培养。直至细胞几乎汇片生长(一般过夜)。用血球计数器对细胞进行计数。


3. 将 vTF7-3 储液涡旋混匀以打散团状物。按照下面的步骤用杯状超声仪进行超声:


3.1 在杯中装入冰水(大约 50% 的冰);


3.2 将装有 vTF7-3 储液的小管放在冰水上;


3.3 以最大功率超声 30 s,储液置冰水上 >30 s,再继续超声。


4. 用 Opti-MEMI 将病毒稀释至 2×107 pfu/ml。


5. 用 0.5 ml/孔的稀释病毒储液(10 pfu/细胞)感染步骤 2 制备的 CV-1 细胞。温育 30 min,每 5~10 min 晃动一次。


6. 在感染结束前 5 min 制备脂质体悬液。加入 1 ml 的 Opti-MEMI 至 12 mm× 75 mm 聚苯乙烯管中(每孔制备一管),涡旋脂质体悬液,加 15 μl 至培养基中,涡旋混匀。加入 5 μg 的重组质粒(来自步骤 1),轻轻混合均匀。


脂质体在储存期间会沉淀,因此在使用前,应将其涡旋混匀。不要使用聚丙烯管,因为 DNA/脂质体混合物会吸附在其表面。


7. 吸出 CV-1 细胞的病毒接种物,直接加入 DNA/脂质体混合物。培养 5~24 h,表达的蛋白质可以用脉冲标记的方法或用「重组痘苗病毒及其产物的鉴定实验」中叙述的方法鉴定。


            展开           
注意事项

1. 所有培养都在加湿的 37℃ 5% CO2 培养箱中培养,除非有特殊说明。


2. 与活细胞接触的器械和试剂都应该是无菌的,操作也必须无菌。

其他

重组质粒:将目的基因亚克隆到 pTF7-5 pTM1 载体或其他含有 T7 启动子的质粒。


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