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植物原位接种介导的小麦高效农杆菌转化方法实验(二)

2020.8.24

5. 转基因幼苗的生长


需要用到以下材料:


( 1 ) Jiffy 7 泥炭颗粒(Jiffy 产品, Norway)


( 2 ) 播种托盘及相应的 24 孔穴盘(可任选供应商)


( 3 ) 适合播种盘大小的培养箱(可任选供应商)


6. 转基因植株的生长


需要用到以下材料:


( 1 ) 12F(直径 12 cm)盆钵,每盆种一株。


( 2 ) 用 Levingtons M2 的混合肥培养植株,并施以 5 g/L 奥绿专用缓释肥(同前)


( 3 ) 用 Pea sticks/split canes 作为支撑物。


( 4 ) 微孔面包袋(Focus Packaging) 用于套袋。


二、方法


1. 母株的生长


( 1 ) 将种子播至施有缓释肥的 M2 混合肥中(同上),深度为 2~3 cm ( 每罐 4 颗)。


( 2 ) 在盆的表层铺一薄层蛭石,以保持表层混合肥的质量。每罐放一个 Teku 植物支持器。


( 3 ) 把盆栽放在 Conviron 生长箱里,培养条件是白天 20℃、夜晚 15℃,16 h 光周期,400 μE/( m2·s ) 的光照(见注 1)。


2. 收获


( 1 ) 开花 16~18 天后收获分蘖,此时胚长至 1 mm 大小。从植株基部剪掉分蘖(见注 2 ) 。


( 2 ) 弃去底部的叶片,保留剑叶。


( 3 ) 将分蘖立即放入装有水的 500 ml 量筒中,修剪分蘖的长度以使剑叶正好位于量筒的顶部。


3. 脱粒


( 1 ) 去除每穗底部 2~3 个小穗。


( 2 ) 从下往上选取第一和第二朵花(图 7.2 ) ,小心地从花上去除颖片和外稃,仅使这两朵花的未成熟种子暴露出来。


( 3 ) 剪去干扰接种的残余组织,即未动过的花(如第三、第四朵花等)的外稃/颖片及芒,切忌损伤裸露的种子,否则会导致共培养时真菌的污染。


( 4 ) 用软刷向上刷穗以去除花药,否则也可能引起真菌生长。


( 5 ) 用湿纸巾擦拭叶片。


( 6 ) 轻轻地用 70%(V/V)乙醇喷穗部,使其在接种前干燥(见注 3) 。


4. 制备农杆菌平板


( 1 ) 制备少量含有质粒的甘油农杆菌。


( 2 ) 从母板上挑取一个单克隆,在加有相应抗生素的 LB 培养基 [ 16 ] 里,28℃ 剧烈振荡培养过夜。取 1 ml 到 Eppendorf 管中,10000 g 离心 30 s。去上清,并用 1 ml 加有 15%(m/V)甘油的 LB 重悬细胞。分装成小份,在 -80°C 保存。每次接种用一份新的甘油农杆菌,使用后弃之。


( 3 ) 接种实验前,用保存的甘油农杆菌在含有相应抗生素的 YEP 平板上划线,使整块平板上长满菌斑。


( 4 ) 封板,28℃ 培养 1 天,或者室温培养 3 天。




5. 农杆菌重悬


( 1 ) 用于接种的麦穗准备好之后,开始制备农杆菌的悬浮液。


( 2 ) 用乙醇擦拭并烧灼一个平头铲,使之充分冷却下来。


( 3 ) 用刮铲轻轻刮平板的表面来收集足量细菌,然后转移到含有 10 ml TSIM 和 400 μmol/L 乙酰丁香酮的 25  ml Universal 管中。应避免带上平板上的胶,因为这会影响接种过程。


( 4 ) 用 1 ml 的 Gilson 移液枪反复吹打重悬细菌,直到变为均匀的悬浊液。


6. 接种


( 1 ) 用 70%(V/V)乙醇对注射器进行消毒处理 4~5 次,然后用无菌水冲洗 4~5 次。确保针孔朝向自己。


( 2 ) 用注射器吸取农杆菌悬浮液。


( 3 ) 手握住穗部,使针尖可以接触到种子的胚。把针放入穗部使针尖大约位于胚乳和盾片的接合部(图 7.3)。盾片轻微的损伤不会产生影响,而且可作为正确接种的证据。


( 4 ) 每次缓慢按下按钮注射 1 μl 悬浮液。50 μl 的注射器,每按一次按钮注射 1 μl 悬浮液。


( 5 ) 对所有外露的种子重复这一过程。


( 6 ) 在所有穗都接种后,在量筒中放一个支持物(如玻璃棒),然后用透明的塑料袋覆盖并在底部封口。让其在 22°C、16 h 光周期、40 μE/( m2· s) 光照条件下生长 2~3 天(见注 4 ) 。


( 7 ) 用 70%(V/V)乙醇清洗注射器 4~5 次,用无菌水冲洗 4~5 次,再用 70% 乙醇洗一次,然后晾干。




7. 隔离


( 1 ) 接种 2~3 天后,将种子从穗上取下放入适合的有盖容器中。


( 2 ) 对种子进行表面消毒:70%(V/V)乙醇 1 min,20%(V/V)Domestos 漂白剂溶液 25 min,期间要搅拌。


( 3 ) 在滤网中用无菌去离子水彻底清洗。


( 4 ) 分离胚,然后放入 W4 培养基中,盾片向上,每皿放 25 个(见注 5) 。


( 5 ) 用 Parafilm 膜密封平板,然后在 28℃、16 h 光周期、80 μE/(m2·s) 光照条件下培养 5 天。


8. 组织培养


( 1 ) 5 天后,将胚轴从盾片上切除(见注 6 ) ,然后转移到新鲜的 W4 培养基上(见注 7) 。


( 2 ) 培养 12 天后,将愈伤组织移到选择培养基上(W4 25G ) 。在 25℃、16 h 光周期、80 μE/(m2·s)  光照条件下培养 2 周(接下来的操作都在这一温度和光照条件下进行)。


( 3 ) 选择 2 周后,将愈伤组织分成小块以便更好地接触到选择培养基,然后移到新鲜的 W4 25G 培养基上。


( 4 ) 继续选择培养 2 周后,将有活力的胚性愈伤移到含有选择试剂的再生培养基上( MRM 25 G)。 2 周后再进行一次转移,将还未发育成芽的愈伤移到新的 MRM 25G 培养基中。


( 5 ) 将再生的芽移到含有 MS20 的 Beatson 罐,然后让其在 25℃ 下培养(见注 8) 。


( 6 ) 让芽生长大约 1 个月,在这期间叶和根应该发育完全。


9. 土壤移植和炼苗


( 1 ) 用自来水湿润 Jiffy7 泥炭丸并放置于 24 孔穴盘中,将穴盘放到培植箱中。


( 2 ) 从 Beatson 罐中把苗移出,避免根部带上琼脂。


( 3 ) 将丛生的苗分开直至每一株苗只有一个芽。


( 4 ) 将苗移到 Jiffy 7 泥炭丸中,确保所有的根被 Jiffy 包埋,使得根能够接触到泥炭。去掉死的和将死的叶片。将生长中的叶片修整到 5~10 cm。在重新盖上培植箱盖前撒点水(见注 9 ) 。


( 5 ) 在 20℃ 生长 2 周后,如需要,植株可以用来做 PCR 检测和盆栽(见注 10)。


( 6 ) 为获得最大的产量,可将苗移到带 M2 培养土的 12F 罐 中( 见上),每罐一株苗。在将苗转移到土壤的过程中不要去除 Jiffy 泥炭丸外的网以保持泥炭丸的完整。


( 7 ) 将开花的植株套袋以减少花粉的传播。


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