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牙髓干细胞的分离培养——牙髓干细胞/乳牙干细胞原代培养

2019.4.03
实验材料

牙髓组织

试剂、试剂盒

灭菌PBSAMSC培养基胶原酶中性蛋白酶免疫磁珠分选时所需试剂:含1%BSA的PBSA与DPSC反应的一抗用STRO-I(小鼠抗人MSC;IgM)CC9(小鼠抗人CD146 MUC-18;IgG2a)或3G5(小鼠抗人外膜细胞;IgM)

仪器、耗材

羊抗小鼠IgG-结合或大鼠抗小鼠IgM-结合磁珠培养瓶和培养皿手术刀片和刀柄70μm细胞滤网非灭菌器材 用于免疫磁珠分选 回转式混合仪DynalMPC®-1磁分离器

实验步骤


(a)用手术刀片将牙髓组织切成小碎片。


(b)将剪碎的组织放入胶原酶/中性蛋白酶混合溶液中(1:1)。


(c)37℃孵育30〜60min,间歇地摇匀组织/消化酶混合物。


(d)消化后,加人足够的MSC培养基,终止酶的活性。


(e)将悬液经70μm细胞滤膜过滤,去除细胞碎片,得到单细胞悬液。


(f)500g离心6min。


(g)倒掉上清液,用MSC培养基重悬细胞。然后进行免疫磁珠分选:和能与DPSC细胞反应的一抗孵育,包括STRO-I(小鼠抗人MSC;IgM),CC9(小鼠抗人CD146/MUC-18;IgG2a),或3G5(小鼠抗人外膜细胞;IgM),20Mg/mL,冰上孵育lh。用含1%BSA的PBSA洗两遍,600g离心6min。羊抗小鼠IgG或大鼠抗小鼠IgM结合磁珠的任意一个二抗孵育,4℃回转式混合仪40min。根据产品说明书推荐的方案,通过DyndMPC®-1磁分离器分离结合磁珠的细胞。


(h)细胞计数,按(1〜10)×103个细胞/cm2密度接种到培养瓶或皿上。


(i)在MSC培养基、37℃和5%CO2的培养箱中培养。


(j)细胞分离后7天,用PBSA洗培养瓶,更换培养基。之后可以一周两次更换培养基,直至细胞达到汇合。

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