一、 人外周血染色体制备

1. 实验原理　人的外周血淋巴细胞培养方法是1960年由Moorhead 提出来的。正常情况下，人外周血小淋巴细胞都处在G1期（或G0期），但在体外给予一定的条件，进行培养，经72 h就可获得大量的有丝分裂细胞。这种取材简易、用血量少的培养方法已被广泛采用。

在培养液中加入植物血凝素（PHA），淋巴细胞受到刺激可转化为淋巴母细胞，进入有丝分裂。短期培养后，经秋水仙素处理，可抑制细胞分裂时纺锤丝的形成，使细胞分裂停止在中期，同时它可改变细胞质的黏度，引起染色体在细胞质中分散。经低渗和固定，即可得到大量的、分散效果好的染色体分裂象。人体的1ml外周血中一般含有约（1～3）×106个小淋巴细胞，足够染色体标本制备和分析之用。本节介绍人外周血淋巴细胞的悬浮培养法，以及染色体标本的制备。

2. 试剂与器材

（1）2ml注射器、培养瓶、刻度吸管，需15磅灭菌20min。离心管、吸管、量筒、载玻片，经洗液按常规清洗、烘干备用。

（2）超净工作台，恒温培养箱，天平，离心机、显微镜等。

（3）试剂：

① 培养基的配制：

RPMI 1640培养基 4ml

小牛血清 1ml

青霉素和链霉素 各100IU/ml

PHA 0.2ml

肝素 1小滴

以5% NaHCO3调pH至7.2～7.4, 4℃备用。

② 肝素：称取0.2g溶于100ml双蒸水中，浓度为0.2%，灭菌。

③ 秋水仙素：生理盐水配制成20μg/ml浓度，灭菌，分装，置－20℃。

④ 低渗液：0.075mol/L KCl。

⑤ 固定液： 甲醇∶冰乙酸（3∶1），临时配制。

⑥ Giemsa工作液：1份原液和９份磷酸缓冲液，临时配制。

⑦ 磷酸缓冲液：1/15mol/L Na2HPO4、1/15mol/L KH2PO4等体积混合。

⑧ 5% NaHCO3灭菌滤器抽滤备用。

3. 实验步骤

（1）接种，培养。

① 在无菌条件下，用灭菌注射器吸取0.2%肝素液（生理盐水配制，灭菌）0.2ml，湿润针筒后，采静脉血1～2ml、转动注射器使血液与肝素充分混匀。

② 无菌条件下，将肝素化血液滴入至外周血培养基内，每5ml培养液内滴入血滴28～30滴（7号针头）轻轻混匀。

③ 置37℃恒温箱内，静止培养68～72h。注意第二天观察培养液有无凝血、溶血或长菌的现象，可每天将培养液摇一摇以便细胞得到充分培养。

④ 终止培养前2～3h，加入浓度为20μg/ml的秋水仙素，每5ml培养基中用7号针头，加3～4滴使最终浓度为0.1μg/ml。轻轻摇匀后，再放入恒温箱内，继续培养2～3h，以积累较多停止在中期的分裂象。

（2）制片。

① 收获细胞：由恒温箱取出培养瓶，用吸管充分吹打培养瓶瓶壁，使细胞全部脱离瓶壁，然后将细胞液移至锥形离心管内，1500转/min，离心10min，去上清液。

② 低渗处理：加入37℃预温的0.075mol/L KCl 8ml，反复吹打（约一百次）后，置37℃水浴箱中低渗处理25min左右。

③ 预固定：加入新鲜制备固定液1ml（甲醇∶冰醋酸=3∶1），轻轻混匀。

④ 离心：2000转/min，离心10min，吸弃上清液。

⑤ 固定：沿离心管壁慢慢加入固定液8ml，轻轻混匀，固定10min。

⑥ 离心：同上，吸去上清液。