大鼠IgM定量EIA试剂盒使用说明

原理

本实验采用双抗体夹心 ELISA法。用抗大鼠IgM单抗包被于酶标板上，标准品和样品中的 IgM与单抗结合，加入酶标抗体，形成免疫复合物连接在板上，加入酶底物TMB，出现蓝色，加终止液硫酸，颜色变黄，在450nm处测OD值，IgM浓度与OD值成正比，可通过绘制标准曲线求出标本中IgM浓度。

试剂盒组成（2-8℃保存）

准备试剂与收集血样

1.          收集标本：血清、血浆（EDTA、肝素抗凝）、细胞培养上清液、尿液等尽早检测，2-8℃保存48小时；更长时间须冷冻（-20 ℃或-70 ℃）保存，避免反复冻融。尿液测定前用标本稀释液作1：10稀释（取20ul，加标本稀释液180ul,稀释10倍）。血清或血浆至少1：50万倍稀释。

2.          标准品液配制：使用前加入1ml蒸馏水混匀，配成10000ng/ml的溶液。设标准管8管，第一管加标本稀释液900ul，第二至第八管加入标本稀释液500ul。在第一管中加入10000ng/ml的标准品溶液100ul混匀后用加样器吸出500ul，移至第二管。如此反复作对倍稀释，从第七管中吸出500ul弃去。第八管为空白对照。

3.          10×标本稀释液用蒸馏水作1:10倍稀释（示例：1ml浓稀释液+9ml蒸馏水）。

4.         洗涤液：用重蒸水1:20稀释（示例：1ml浓缩洗涤液加入19ml的重蒸水）

检测程序

1.          加样：每孔各加入标准品或待测样品100ul，将反应板充分混匀后置37℃120分钟。

2.          洗板：用洗涤液将反应板充分洗涤4-6次，向滤纸上印干。。

3.          每孔加酶标抗体工作液100ul。将反应板置37℃60分钟。

4.          洗板：同前。

5.          每孔加入底物工作液100ul，置37 ℃暗处反应15分钟。

6.          每孔加入100ul终止液混匀。

7.          30分钟内用酶标仪在450nm处测吸光值。

结果计算与判断

1.          所有OD值都应减除空白值后再行计算。

2.          以标准品1000、500、250、125、62、31、15.6、0 ng/ml为横坐标，OD值为纵坐标，在坐标纸上作图，画出标准曲线。

3.          根据样品OD值在该曲线图上查出相应IgM含量，再乘上稀释倍数即可。

试剂盒性能

             1.   灵敏度：最小的IgM 检测浓度小于8ng/ml。

2.        特异性：可同时检测重组或天然的大鼠IgM。不与大鼠其它细胞因子有交叉反应。

3.        重复性：板内、板见变异系数均小于10％。

注意事项

             1.   以上标准孔及待测样品均建议做复孔，每次测定应同时做标准曲线。

 2.   洗涤过程很关键。洗涤不充分将导致精确度误差及OD值错误地升高。

             3.   板条开封后剩余板条要再封好，保持板条干燥。

             4.   本试剂盒宜置4^oC冰箱保存。

 5.   本试剂盒仅用于科研，不能用于临床诊断！