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食用合成色素的测定——薄层层析法

2018.3.22

1、原理

聚酰胺是具有二极性的化合物,在酸性条件下与水溶性酸性染料结合,而与天然色素、蛋白质、脂肪、淀粉等物质分离,然后再在碱性条件下解吸色素,再在薄层层析法进行分离鉴别,与标准比较定性、定量(纸层析进行定性,薄层层析进行定量)。

2、操作步骤

食品其形态是千变万化的,添加在食品中的色素方式亦是各种各样的,有的拼色加入,有的加在食品的表层几个色素点,有的覆盖一层色素, 有的用色素和鸡蛋,很形象地作成传说中的故事、动物、花卉以及象征丰收、延年益寿、节日愉快、生日快乐等附在食品的最显眼的地方,属于这类食品的有中式糕点、西式糕点,还有饮料、小食品等色素的测定。样品不同,处理方法则就不一样。

⑴ 样品表面色素的测定

如中式、西式、生日蛋糕、节日寿糕一类,首先将代表性的样品整体称重,记录重量,然后分别取下相同着色部分,进行提取和分离,不要将部分着色样品和整个或大部分不着色样品混在一起。如果这样,分离就困难,而且增加分离误差,使结果偏差大,例如一块蛋糕重500g,取下色素部分经测定是50mg,表示500g重的含量即万分之一。

⑵ 样品外皮色素的测定

如儿童食品中的糖豆、朱古力豆、红心果等样品,只需将外表皮色素用少量的水溶下来(在用水溶解之前,先称重量并记录),并定容一定体积(将没有色素的样品弃去),供检验用,其计算与上面一样。

⑶ 非酒精性饮料中色素的测定(各种汽水、桔子汁等)

(1) 吸附

吸50ml样→与烧杯中→在电炉上加热至沸→不断搅拌除CO2→加1g聚酰胺粉(60℃活化1小时)→充分搅拌→使色素完全被聚酰胺粉吸附→用布氏漏斗过滤→用80℃热水20ml洗沉淀物→用甲醇-甲酸(6︰4)20ml再洗沉淀物(除天然色素)→直到滤下来溶液无色→再用80℃热水150ml分次洗沉淀物。

(2) 解吸

在不抽滤条件下,将9︰1乙醇氨液加在沉淀物中使吸附在聚酰胺粉上的色素全部解脱下来,收集于蒸发器中,水浴中浓液到5ml左右,加3滴20%柠檬酸溶液(使色素稳定),定容10ml,供薄层点样用。

(3) 注意事项

样品在加入聚酰胺粉之前,要用20%的柠檬酸调节pH=4(聚酰胺粉末在弱酸性溶液中对色素吸附力强,吸附亦完全)。

如果样品不含天然色素,除CO2后直接加聚酰胺吸附。

⑷ 对各种糖果色素的测定

1) 样品处理

a.      硬糖(不含蛋白质、淀粉)粉碎→称样3g→加50ml水溶解→再加30%柠檬酸3滴调pH=4

b.     软糖(含淀粉高果饴)除外层冰糖屑→切碎→加50ml热水溶解→用20%柠檬酸调pH=4→加淀粉酶1ml(消化淀粉)→90℃水浴15分钟→溶液中出现沉淀物直到变清

c.     奶糖→加9︰1乙醇氨溶液溶解→用1︰10H2SO4调pH→加1%钨酸钠使蛋白质沉淀,奶脂凝集沉淀→布氏漏斗抽滤

2) 吸附色素

1g聚酰胺粉+糖液→70℃水浴→搅拌使之充分吸附→用布氏漏斗抽滤→用80℃水洗漏斗上的沉淀物→再用丙酮洗(除油脂,硬糖不必)→再用80℃水洗沉淀物→洗到pH与原水相同

3) 解吸色素

沉淀物用乙醇氨解吸液全部解吸→收集于蒸发皿中→水浴浓液到4ml→加20%柠檬酸3滴→用水定容10ml→留做点样用(单一色素直接比色,拼色要分离,先定性后定量)

⑸ 肉和肉制品中色素的测定

1) 前处理

称处理样→加海砂3g和20ml丙酮→于研钵中一起研→除去脂肪和水分→除去丙酮

2) 解吸样液中的色素

将上面沉淀物放入布氏漏斗→用解吸液从肉蛋白中使色素全部解吸下来→加热到70℃→用1︰10H2SO4调PH再加1ml10%钨酸钠→使蛋白质全部凝聚沉淀→用布氏漏斗抽滤→用70℃水20ml洗漏斗→收集全部滤液

3) 吸附样液中的色素

称1g聚酰胺粉+上面的滤液→搅拌→抽滤→用水洗漏斗中沉淀物→直到滤水与原水PH相同

4) 解吸样液中色素(与非酒精性饮料相同)

⑹ 果脯类色素的测定

1) 处理

取样研碎后称2g→加50ml水→加热70℃使溶解

2) 吸附

吸附剂1g+上述液→抽滤→用70℃热水洗沉淀物

3) 除天然色素

用甲醇-甲酸(6︰4)混合液解吸天然色素→直到滤液无色为止→再加甲醇10ml进一步除天然色素→70℃热水洗,不断搅拌

4) 解吸

用解吸液解吸样品沉淀物中全部人工合成色素→浓液解吸液(甲醇、氨)直到无甲醇、氨时→用1︰10H2SO4调pH=4→再按上述加吸附剂操作重复1-2次,把天然色素全部去净为止,最后解吸、定容同上。

⑺ 各种加工蔬菜中色素的测定

这一类色素测定按理论应该以蜜饯的操作来处理,但在实验中这些样品胶体过多,使解吸、过滤等操作非常困难,所以我们应该按下述方法进行:取样20g(干菜2g),加入100ml 80%的乙醇溶液,浸泡2小时,再以含有1%氨水的70%乙醇反复浸出,合并浸出液,直到色素全部被洗脱下来,置70-80℃水浴上,将全部浸出液浓缩,待氨全部逸出去(没有氨味),调pH=4,加1g聚酰胺吸附,然后用布氏漏斗过滤,以200ml 70-80℃水洗涤漏斗的聚酰胺粉,然后用甲醇-甲酸洗脱天然色素。以上操作同蜜饯中色素的测定方法。

⑻ 提纯色素溶液的纸层析定性

为了判断样品中存在有几种色素以及是什么色素,必须进行纸层析进行鉴定。

经浓缩后样品色素溶液→于新华中速层析滤纸上点样→点样量3-5微升(若样品含量低可取出1ml在浓缩至0.2ml再点样)→点样点的直径应不超过2毫米为宜→点样线距底边2厘米→样点间距离以及左右纸边各距2厘米→用展开剂展开→测量各色素点的Rf值→于标准色素Rf值对照→确定何种色素(以标准色素斑点Rf值衡量样品各色素斑点的Rf值是否于标准点在同一条直线上,色素的颜色是否完全一致,就可确定样品色素属于何种色素)。                       

Rf(比移值)=斑点移动距离/溶剂前沿距离                        

所使用的展开剂有:

1)正丁醇︰无水乙醇︰1%氨水 = 6︰2︰3

2)正丁醇︰吡啶︰1%氨水 = 6︰3︰4

3)异丁醇︰无水乙醇︰水 = 3︰2︰2

⑼ 提纯色素溶液的薄层分离和定量

经过纸层析定性之后,含有一种色素的样液定容之后,离心即可定量;含有两种以上的复合色素的样品溶液,需要经过薄层分离为单色素后,再用比色法分别定量,测定出各种色素的含量。

具体步骤是:薄层板制板→点样层析→比色→标准曲线绘制→计算含量

1) 薄层板制备

聚酰胺粉1g于研钵中→加15ml 75%甲酸→搅拌,使聚酰胺全部溶解→加7.5g硅胶G→研磨1分钟→立即涂板(玻璃板要求光滑平整,先用水洗净,干燥后用酒精擦拭干净,涂板时可用涂本器或手工玻璃涂布)→可涂15×10厘米玻璃板三块(厚度为0.25-0.3毫米)→玻璃板放入盛有少量水的大玻璃缸中→盖好盖子→使玻璃板中的甲酸由缸底的水吸取→放2-3小时→取出玻璃板→于空气中风干→于60-65℃烘箱30分钟→放入干燥器中备用

2) 点样层析

用点样管(毛细管、微量注射器)将浓缩并定容的样液点在薄层板上→基线距底边2厘米→点成与底边平行的条状→两端距边各为2厘米,点样量一般为0.4ml→点样时要用电吹风机边点边吹干→然后进行展层析

展层缸先用溶剂系流30分钟→再把点好样的薄层板放入展析缸用上行法展开→薄板下端浸入溶液0.5-1厘米→大约1小时看色素已明显分开后→即可取出薄板→晾干

对溶剂系流的选择是:a) 分离胭脂红、苋菜红、新红、柠檬黄、桔黄、靛蓝等用正丁醇︰吡啶︰5%氨水=6︰6︰4(这种展开剂主要分离靛蓝,因为靛蓝上升很快,其它上升很慢);b) 分离柠檬黄、胭脂红、苋菜红、柠檬黄、桔黄等时用展开剂为2.5%柠檬酸钠︰氨水=4︰3(柠檬黄上升很快,其它上升慢);c) 对于分离两种红色素(苋菜红、胭脂红)的食品用甲醇︰乙二胺︰氨水=10︰3︰4(主要是苋菜红与胭脂红上升快,其它色素上升慢)。

3) 比色定量

将薄层板展开后→用小刀分别将各条色斑刮下→移入砂芯漏斗→用乙醇氨溶液解吸抽滤→于水浴上蒸发到无氨味→定容10ml→分别测出消光值E(根据各种色素的最大吸收波长测定其光密度)→从标准曲线上查出相应的各色素含量.

4) 标准曲线的制备

先配成标准色素贮备液(100微克/ml),称0.1g标准色素加水稀释至1000ml

10ml比色管 0   1     2     3     4    5     6     7    8    9

标准应用液 0  0.1  0.5  1.0  2.0  3.0  4.0  5.0  6.0 7.0

加水                     分别加水至10ml

相当于μg/ml 0  1    5    10   20   30   40   50   60   70

分别测出EO-E9的消光值以水为参比,以色素浓度为横生标,消光值为纵坐标,绘制标准曲线。以水为参比,pH值为6,各色素的最大吸收波长为下:

胭脂红 508纳米;柠檬黄 428纳米;苋菜红 520纳米;

晚霞黄 485纳米;赤藓红 528纳米;靛蓝  610纳米;

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