亚细胞结构的分离与鉴定-2
第三节 微粒体的分离
细胞通过匀浆破碎时，细胞质膜碎成片段，这些膜片段的末端融合形成的直径小于100nm的小泡。来自不同细胞器（细胞核、线粒体、质膜、内质网等）的小泡有不同的特性，所以可以将这些小泡相互分离。由内膜系统衍生而来的小膜泡形成相似大小的膜泡异质性集合体，称微粒体（microsome）。分离微粒体的方法是利用分级离心方法，去掉细胞核、线粒体后，经超速离心法而制备。具体步骤如下。
1. 将体重约为300g饥俄20h后的大鼠断头，取出肝脏，洗涤，剪碎，加2倍体积的介质溶液（含0.15mol/L蔗糖，0.025mol/L KCl，0.1mol/L Tris-HCl pH7.4, 0.005mol/L MgCl2），在玻璃匀浆器中匀浆；
2. 15000g×10min离心，弃沉淀，取上清；
3. 100000g×60min离心，弃上清，取沉淀，沉淀即为微粒体；
4. 将微粒体保存在介质溶液中。
第四节 溶酶体的分离
溶酶体是由一层单位膜包围，内含多种酸性水解酶的泡状结构。溶酶体含有40多种水解酶，其中包括蛋白酶、核酸降解酶和糖苷酶等。其主要功能是对细胞内物质的消化作用。此外溶酶体与器官形成、激素分泌的调节以及某些疾病的发生密切相关。可采用如下方法分离获得。
1.制备蔗糖梯度溶液：取带有两个小杯的梯度混合器，两个小杯分别装入117ml 2.1mol/L蔗糖和13ml 1.1mol/L的蔗糖；
2.将大鼠处死取出肾脏，以1:8（重量/体积）比例加入0.3mol/L蔗糖，然后在玻璃匀浆器中匀浆肾脏组织；
3.以150g ×10min离心，弃沉淀，取上清液，9000g×3min离心，弃上清液，取沉淀；
4.沉淀从上至下依次为白色、黄褐色、暗褐色三种不同颜色层，上层为膜成分的混合物，中层为线粒体部分，最底层则为半纯化的溶酶体。先用吸管小心吸掉上层，然后沿管壁加入几毫升0.3mol/L蔗糖，慢慢摇管使界面层悬浮起来弃之。用0.3mol/L蔗糖洗涤1次，底层溶酶体部分悬浮在2.5ml
0.3mol/L蔗糖中；5.将2ml悬浮的半纯化的溶酶体铺在蔗糖梯度上面，用玻璃棒搅动最上层的梯度，使梯度和溶酶体之间的界面破坏，然后100000g×150min离心，离心结果可见：梯度溶液分3条明显的带和较少的沉淀。最下层的暗黄色到褐色的带即为纯化的溶酶体。以上所有操作需在0~4℃下进行。
第五节 细胞总蛋白质的分离提取
细胞器是一种动态的结构，如内质网、细胞核和高尔基体等，其蛋白质组成除了驻留蛋白质之外，还包括穿梭蛋白质和瞬间相互作用的蛋白质。对于这些组成成分的研究，即亚细胞蛋白质组研究将有助于对这些蛋白质做全面的挖掘，从而对细胞器的功能作深入的阐述。蛋白质提取与制备具体操作方法如下：
一、材料的选择
早年为了研究的方便，尽量寻找含某种蛋白质丰富的器官从中提取蛋白质。
但目前经常遇到的多是含量低的器官或组织且量也很小，如下丘脑、松果体、细胞膜或内膜等原材料，因而对提取要求更复杂一些。原料的选择主要依据实验目的定。一般要注意种属的关系，事前调查制备的难易情况。
二、蛋白质的分离
（一）细胞的破碎
细胞的破碎材料选定通常要进行处理。要剔除结缔组织及脂肪组织。如不能立即进行实验，则应冷冻保存。除了提取细胞外成分，对细胞内及多细胞生物组织中的蛋白质的分离提取均须先将细胞破碎，使其充分释放到溶液中。不同生物体或同一生物体不同的组织，其细胞破坏难易不一，使用方法也不完全相同。如动物胰、肝、脑组织一般较柔软，作普通匀浆器磨研即可，肌肉及心组织较韧，需预先绞碎再制成匀桨。
1. 机械方法
主要通过机械切力的作用使组织细胞破坏。常用器械有：①高速组织捣碎机（转速可达10000rpm，具高速转动的锋利的刀片），宜用于动物内脏组织的破碎；②玻璃匀浆器（用两个磨砂面相互摩擦，将细胞磨碎），适用于少量材料，也可用不锈钢或硬质塑料等。小量的也可用乳钵与适当的缓冲剂磨碎提取，也可加氧化铝、石英砂及玻璃粉磨细。但在磨细时局部往往生热导致变性或pH
显著变化，尤其用玻璃粉和氧化铝时。此外，磨细剂的吸附也可导致损失。
2. 物理方法
主要通过各种物理因素的作用，使组织细胞破碎的方法。①反复冻融法：于冷藏库或干冰反复于零下15～20℃使之冻固，然后缓慢地融解，如此反复操作，使大部分细胞及细胞内颗粒破坏。由于渗透压的变化，使结合水冻结产生组织的变性，冰片将细胞膜破碎，使蛋白质可溶化，成为粘稠的浓溶液，但脂蛋白冻结变性；②冷热变替法：将材料投入沸水中，于90℃左右维持数min，立即置于冰浴中使之迅速冷却，绝大部分细胞被破坏；③超声波法：暴露于9～10
千兆声波或10～500
千兆超声波所产生的机械振动，只要有设备该法方便且效果也好，但一次处理量较小。应用超声波处理时应注意避免溶液中气泡的存在。处理一些超声波敏感的蛋白质酶时宜慎重；④加压破碎法：加一定气压或水压也可使细胞破碎。
3. 化学及生物化学方法 这类方法包括①有机溶媒法：粉碎后的新鲜材料在0℃以下加入5～10
倍量的丙酮，迅速搅拌均匀，可破碎细胞膜，破坏蛋白质与脂质的结合。蛋白质一般不变性，被脱脂和脱水成为干燥粉末。用少量乙醚洗，经滤纸干燥，如脱氢酶等可保存数月不失去活性；②自溶法：将待破碎的鲜材料在一定pH
和适当的温度下，利用自身的蛋白酶将细胞破坏，使细胞内含物释放出来。比较稳定，变性较难，蛋白质不被分解而可溶化。利用该法可从胰脏制取羧肽酶。自体融解时需要时间，需加少量甲苯、氯仿等。应防止细菌污染。于温室30℃左右较早溶化。自体融解过程中pH
显著变化，随时要调节pH。自溶温度选在0～4℃，因自溶时间较长，不易控制，所以制备活性蛋白质时较少用；③酶法：与前述的自溶法同理，用胰蛋白酶等蛋白酶除去变性蛋白质。但值得提出的是溶菌酶处理时，它能水解构成枯草菌等菌体膜的多糖类。能溶解菌的酶分布很广。尤其卵白中含量高，而多易结晶化。1g菌体加1～10mg
溶菌酶， pH6.2～7.0 1h 内完全溶菌。于生理食盐水或0.2mol
蔗糖溶液中溶菌，虽失去细胞膜，但原形质没有脱出。除溶菌酶外，蜗牛酶及纤维素酶也常被选为破坏细菌及植物细胞用。表面活性剂处理较常用的有十二烷基磺酸钠、氯化十二烷基吡啶及去氧胆酸钠等。此外一些细胞膜较脆弱的细胞，可把它们置于水或低渗缓冲剂中透析将细胞胀破。
（二）细胞器蛋白的分离
制备某一种生物大分子需要采用细胞中某一部分的材料，或者为了纯化某一特定细胞器上的生物大分子，防止其他细胞组分的干扰，细胞破碎后常将细胞内各组分先行分离，对于制备一些难度较大需求纯度较高的生物大分子是有利的。各类生物大分子在细胞内的分布是不同的。DNA
几乎全部集中在细胞核内。RNA
则大部分分布于细胞质。各种酶在细胞内分布也有一定位置。因此制备细胞器上的生物大分子时，预先须对整个细胞结构和各类生物大分子在细胞内分布有所了解。
细胞经过破碎后，在适当介质中进行差速离心。利用细胞各组分质量大小不同，沉降于离心管内不同区域，分离后即得所需组分。细胞器的分离制备、介质的选择十分重要。最早使用的介质是生理盐水。因它容易使亚细胞颗粒发生聚集作用结成块状，沉淀分离效果不理想，现一般改用蔗糖、Ficoll（一种蔗糖多聚物）或葡萄糖-聚乙二醇等高分子溶液。水溶液提取：大部分蛋白质均溶于水、稀盐、稀碱或稀酸溶液中。因此蛋白质的提取一般以水为主。稀盐溶液和缓冲溶液对蛋白质稳定性好、溶度大，也是提取蛋白质的最常用溶剂。
