双色同步成像在荧光共定位等成像实验中的应用（一）
荧光的共定位是当今生物显微成像中一个极为常见的技术，两个或者更多种不同颜色的荧光探针被用来标记不同的结构/位点，使得其相互关系得以明晰地在合并的图像上展现。随着研究者对于实验的要求越来越高，这些荧光共定位的成像逐渐被希望能用于荧光强度高速变化或者样品本身位置不断变化的实验中，比如活动的斑马鱼、线虫体内两类神经细胞的荧光共定位成像。在这些实验中，由于样品本身是运动的，两个颜色的成像时间间隔越短，越能够反映荧光探针共定位的真实情况。
在另外一些实验中，同一个荧光探针的荧光颜色(波长)会随着环境的变化而发生变化，那么前后两种颜色荧光强度的比值就能反映出环境的变化，如Di4之于细胞膜电位，Cameleon之于Ca离子浓度等等。当相关的环境变化速度比较快的时候，两个颜色的成像时间间隔越短，测量也就越精确。
综合以上两类成像实验，均是需要尽可能地将两个不同颜色荧光信号在同一时刻拍摄下来，那么最理想的情况就是我们在这篇Application notes中所提到的双色同步成像，即完全同时地拍摄两个颜色通道的荧光信号。
双色同步成像——采用W-View GEMINI的完全同步成像
双色同步成像最直接的思路就是用彩色相机，但如今绝大多数的彩色相机是在黑白芯片的基础上将每个像素前添加滤光涂层（一般为红、绿、蓝三种，如下图），此彩色滤光涂层使得不同的像素可以分别得到不同的颜色信息，最后合成出彩色的图片。这样的设计在明场成像（如HE染色，免疫组化切片）中不可或缺，但对于生物荧光信号的成像却是有缺陷的。首先，滤光涂层的出现会吸收或反射部分入射光信号，降低整个芯片的灵敏度，在信号本来就较弱的荧光拍摄中会影响到成像信噪比；其次，由于不同像素前存在不同颜色的滤光涂层，对于单色光信号——比如荧光信号——的实际分辨率将被降低。换句话说，对于一台140万像素的彩色CCD相机，其真正能够检测到绿色荧光信号的像素仅有约70万个像素，其余的70万像素的绿光强度信息均为计算获得（注：因为绿色为人眼最为敏感的颜色，所以一般彩色相机中以4个像素为一组，两个像素采用绿色涂层，其余两个像素则分别采用蓝色及红色涂层）。更重要的，如果采用这类彩色相机用于双色荧光同步成像，一些颜色并不是红绿蓝三种颜色（对应彩色相机像素上的三种滤光涂层）的荧光探针将受到极大的限制。
所以传统上，许多实验室通过切换显微镜上的滤光块转盘或者是采用滤光轮进行不同颜色之间的切换。但这样无法做到完全同步拍摄两个颜色的图片，滤光块转盘的切换时间需要约1秒钟，而滤光轮不同滤光片之间的每一次切换也需要几十毫秒时间，事实上影响了实验的时间分辨率，所以在比较高速的比例成像等场合，采用滤光轮或者滤光块转盘都容易造成数据的误差（举例计算请参考下面所示的“应用实例1”）。
而采用滨松W-View GEMINI则完全没有这样的担心，两个颜色的信号被成像到相机的上下两半感光芯片上，实现了两个颜色成像的完全同步。
