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细胞技术专题:大鼠视神经少突胶质细胞培养实验(一)

2020.6.16

标签: 大鼠 视神经 少突 胶质

大鼠视神经少突胶质细胞培养可以:(1)获得大鼠视神经少突胶质细胞;(2)用于视神经损伤修复研究;(3)用于少突胶质细胞相关课题研究。

实验方法
实验方法原理采用视神经,DMEM/F12条件培养基培养,观察细胞形态及生长,并进行免疫组织化学鉴定。
实验材料

Wistar大鼠

试剂、试剂盒

亚硒酸钠 腐胺 转铁蛋白 胰岛素 甲状腺素 黄体酮 谷氨酰胺 小牛血清 兔抗鼠GC抗体

仪器、耗材

眼科剪 滴管 离心机 培养皿 CO2培养箱

实验步骤

一、实验步骤

1.  取新生2 d 的Wistar大鼠10 只,无菌条件下取出双侧视神经。

 

2.  接种至24孔培养板内经多聚赖氨酸处理的盖玻片上。

 

3.  加入含30g·L-1 小牛血清的DMEM/F12 培养基,37°C,50mL/L CO2,100%湿度连续培养3 d 。

 

4.  3 d 后弃废液,改为含 5g·L-1 小牛血清DMEM/F12 条件培养液继续培养。

 

5.  每周换液2次。在获得足够的细胞数量后,改用无血清条件培养液继续培养,每2 d 换液一次。


二、形态学观察

每天在倒置显微镜,观察培养细胞的生长过程和形态学变化并拍照。

三、免疫细胞化学鉴定


1.  将含细胞盖玻片取出,0.01 mol·L-1 PBS冲洗3 次×5 min。

2.  冷丙酮固定10 min。

3.  PBS冲洗(3 次×5 min)。

4.  30g·L-1 过氧化氢室温孵育15 min。

5.  PBS冲洗3 次×5 min。

6.  滴加正常山羊血清,室温孵育20 min。

7.  滴加1:100 GC抗体,阴性对照以PBS代替一抗,37°C孵育60 min。

8.  PBS冲洗3 次×5 min。

9.  滴加 生物素标记羊抗兔IgG,37°C,20 min。

10.  PBS冲洗3 次×5 min。

11.  滴加辣根酶标记链酶卵白素工作液。

12.  DAB工作 液显色,自来水终止反应。

13.  脱水,透明,DPX封片保存。


四、结果

1. 形态学观察结果


组织块24 h 开始贴壁,48~72 h 可见神经组织边缘游出少量细胞,主要为圆形或梭形(图 1)。8~9 d 左右,细胞基本铺满培养孔。此时改用无血清条件培养基培养进行纯化。培养过程中,部分细胞死亡。12 d 左右获得的细胞胞体基本为呈圆形或多角型,直径约 6~10 µm。细胞核较大,胞质少(图 2)。


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