在核酸、蛋白浓度检测过程中，230nm、260nm、280nm代表什么？
在核酸、蛋白浓度检测过程中，230nm、260nm、280nm这几个数值经常会出现，那这几个数值代表什么？他们之间的最优关系又是什么呢？
230nm、260nm、280nm
230nm：碳水化合物最高吸收峰的吸收波长，与A260的比值可进行核酸样品纯度评估。A230产生负值可能是由于在低核酸浓度的样液中存在一些干扰成分。
260nm：核酸最高吸收峰的吸收波长，其吸收紫外光的性质是嘌呤环和嘧啶环的共轭双键系统所具有的，所以嘌呤和嘧啶以及一切含有它们的物质，不论是核苷、核苷酸或核酸在260nm处都会一个最高吸收峰。
280nm：蛋白质由于含有芳香氨基酸，因此也能吸收紫外光，通常蛋白质的吸收高峰在280nm波长处。其与260nm处的吸光度比值，经常被用于判断核酸样品的纯度。
除了这三个常见的波长外，在核酸检测过程中340nm往往会被用来检测样品缓冲液的浊度和其他干扰因子。该值应该接近0.0，如果不是，表明溶液中有悬浮物。
图1. 核酸、蛋白质吸光度谱
260/230、260/280
纯度好的DNA或RNA，在pH7-8.5下：
A260 / A280比值应大于1.8（DNA）或者2.0（RNA）。
如果比值低于1.8 或者2.0，表示存在蛋白质或者酚类物质的影响。
较纯净的核酸A260/A230的比值一般在1.8-2.2之间。
比值降低往往是样品中存在一些污染物，如碳水化合物、盐（胍盐）等。
但实际样品情况往往要相对复杂，如《分子克隆实验指南》(第三版)所述，当 0.5％BSA蛋白质污染时，A260和A280的数值都下降，其结果是260/280的比值略微下降。但同时，蛋白残留会导致A230的数值明显上升，进而显著影响260/230的比值。也就是说，如果样品的260/280比值略低于标准值，但260 /230下降明显，那么就应该考虑污染原因是蛋白残留，而不是胍盐残留。
酚的最大吸收峰在270nm。酚的残留会增加A230、A260和A280的数值，同时酚的吸收峰与核酸的吸收峰合并后，最大吸收峰会出现在270nm附近。因此当样品最大吸收峰会出现在270nm附近，且260/280=1~1.5, 260/230=1~1.5，那么污染原因就应该考虑是酚残留。
胍盐会在小于230nm处产生大的吸收峰，进而显著影响260/230比值，但胍盐残留不会影响A260、A280的数值，以及260/280的比值。也就是说，如果核酸样品的260/280符合要求，但260/230<1，那么污染原因就应该考虑是胍盐残留。
图2. 纯DNA和受污染DNA的吸光度谱
其他影响因素
样品缓冲液pH值、离子浓度等
核酸的吸光值受pH值和缓冲液离子浓度影响，只有在一定的pH值和低离子浓度的条件下（如TE），才能得到精确的检测结果。水由于pH值不稳定，可能会导致检测误差。此外一些缓冲液在紫外范围内存在自身吸收，为了确保准确测量，请使用与悬浮或洗脱样品时相同的缓冲液。
样品浓度
由于样品中不可避免存在一些细小的颗粒，这些小颗粒的存在干扰测试效果，为了减少颗粒对检测结果的影响，要求样品吸光值至少大于0.1A，以减小颗粒的干扰。
操作因素
样品混合要充分，否则容易出现样品浓度重复检测波动大；混合液不能存在气泡，空白页无悬浮液，否则读数漂移剧烈；
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