示踪细胞化学实验
由于高电子密度示踪剂很容易在细胞间隙扩散,并且如果细胞发生损伤,示踪剂还可进入到细胞中去,因此可利用此方法观察细胞连接及细胞损伤情况。常用的示踪剂有镧、过氧化物酶等。一般采用孵育法,即组织块在示踪液中孵育。也有人采用血管灌注法,但基底膜可阻止示踪剂进入细胞间隙或细胞内,因此一般只是在研究血管通透性改变时才用血管灌注法,大多数情况下用孵育法。
实验材料 | |
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试剂、试剂盒 | |
实验步骤 | 1. 4% 硝酸镧配制,PH 7.8,用 NaOH 调,边加边搅拌,使溶液呈乳白色。 2. 15~25℃ 条件下,组织用 1%~1.5% 硝酸镧、2%~3% 戊二醛-0.1 mol/L 二甲胂酸钠缓冲液前固定2~4 h。 3. 1% 硝酸镧-二甲胂酸钠缓冲液漂洗 30 min 左右。 4. 1% 硝酸镧、1% 锇酸-二甲胂酸钠缓冲液固定 1~2 h。 5. 包埋、切片同常规。 |
注意事项 | 1. 由于示踪剂的渗透有限,修块时需注意,不要太深。 2. 示踪剂的渗透情况与孵育时的条件有关>如温度、时间等,因此实际应用还需根据具体情况摸索。 3. 由于镧有电子染色作用,所以一般情况下不需再染色,当然按照常规方法进行染色也可,对结果并无影响。 4. 组织或细胞在含_液体中的时间不宜过长,否则切片困难。 展开 |
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