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做人外周血流式相关问题

2020.4.06

在下最近作人外周血流式,作表面及其胞内染色,试剂说明书说要先分离外周血单个核细胞再染色,我有时候分的红细胞比较多,其他的方法试过了,都改进的不好,我担心红细胞会有影响,想在分离出PBMC以后如果红细胞比较多的话,就用红细胞裂解液裂解一下,但是我有如下问题,希望这样做过的同志指点一下,感激不禁。

(1)有人这样在分离PBMC以后再裂解的吗(我知道一般是在全血染色后再裂解红细胞)?

(2)这样会影响流式检测吗?

(3)用的裂解液配方是什么(最好是自己用过的)。

(4)用法是什么{我是在如果PBMC分出来以后要是红细胞比较多的时候使用,这样要怎样把分出的PBMC稀释,加多少裂解液 裂解多长时间,裂解后洗涤几次等等}。

我曾做骨髓液分离单个核细胞而后做流式,一般来说用Ficoll分过之后即便还有红细胞残留,上流式也可通过“设门”根据细胞形态大小将红细胞剔除。若红细胞残留太多,则可通过红细胞裂解液进一步去除之。我用的裂解液配方是:

碳酸氢钾(KHCO3) 1.0g

氯化氨(NH4CL) 8.3g

EDTA-Na2 0.037g 加双H2O至1000ml,为工作液。

配好后4度冰箱保存,使用时效果更好。我是在Ficoll分过之后用的,所以一般根据离心后EP管里细胞团的大小加红细胞裂解液,通常5ml骨髓液分离单个核细胞后得到的细胞再加500ul裂解液,震荡混匀置2-5分钟红细胞就基本上裂解干净了。洗涤次数看白细胞多少而定,因为洗的次数越多,损失就越多。我一般洗一到两次就OK了。做了很久没发现这样处理影响结果。有一点,我是在这样处理后才标记抗体的,楼上的说是标记过才溶红细胞,所以建议在溶的时候时间不宜过长,洗涤次数也不宜过多,以免将标记上的单抗洗脱。

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