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细胞凋亡:流式细胞仪检测实验

2019.10.20

  • 用次GoZG1 DNA峰值计算细胞凋亡

  • 用TUNEL流式细胞定量凋亡细胞

  • 通过TUNEL组织切面中的凋亡细胞的原位杂交

           

实验方法原理
实验材料

要分析的细胞 在FACS缓冲液中

试剂、试剂盒

FACS缓冲液 冰冷的100%乙醇(如果细胞是抗体标记的则用70%乙醇) 1 mg ml RNase A 含50μg ml 二碘化丙锭(PI)的PBS

仪器、耗材

流式细胞仪

实验步骤

1)凋亡刺激后,从培养液中沉淀所要分析的细胞,同样沉淀一未处理的对照培养液。重悬于3 ml的冰冷的FACS缓冲液,然后300 g离心5 min沉淀细胞。轻轻晃动试管以重悬沉淀。


如果同时对细胞其他表面表达的Marker染色,这步应该在固定之前做。


2a)如果细胞没有被其他荧光团标记的抗体染色:重悬细胞于FACS缓冲液,边涡旋振 荡边加入1倍体积的冰冷的100%乙醇,通过这样的方式固定细胞。室温孵育细胞 30 min。


2b)如果细胞被其他突光团标记的抗体染色:重悬细胞于500〜1000μL FACS缓冲液,边 轻柔涡旋振荡边加入3倍体积的冰冷的70%乙醇。于4℃孵育细胞,不少于1 h。使用乙醇作为固定剂,这点很关键。其他的固定剂比如戊二醛或甲醛由于染色质的交联不能尽 可能地保持亚二倍体峰值。


3)沉淀细胞。重悬于冰冷的FACS缓冲液,然后300 g离心5 min沉淀细胞。重悬细胞于250〜500μL含40μg/ml RNase A和50μg/ml 二碘化丙锭的FACS缓冲液。 室温暗室孵育不少于30 min。


4)用流式细胞仪(FL2或FL3)以线性模式(Holmes and Fowlkes, 1991)分析细胞。 可以通过选通低于大的G0/G1DNA峰值的区域的染色细胞来计算细胞凋亡的部分。

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