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激光扫描共焦显微镜技术及应用(二)

2020.3.28

五、激光扫描共焦显微镜技术的应用
定位、定量
三维重组
动态测量
¨ 活细胞或组织内游离Ca2+浓度的测量
¨ 活细胞内H+浓度( pH值)的测量
¨ 自由基的检测
¨ 药物进入细胞的动态过程、定位分布及定量
应用:细胞膜电位的测量
      荧光漂白恢复(FRAP)的测量
      笼锁解笼锁的测量
      荧光能量共振转移(FRET)的测量
      其他应用
1、定位、定量
免疫荧光标记(单标、双标或三 标)的定位、定量。如:细胞膜受体或抗原的分布,
微丝、微管的分布、 两种或三种蛋白的共存与共定位、蛋白与细胞器的共定位
细胞凋亡: AnnexinV-fitc + PI
末端原位杂交-fitc + PI
荧光原位杂交: 染色体基因定位
单细胞凝胶电泳
GFP的表达
游离Ca2+ 的分布与定量
定位、定量研究中常用荧光探针
1)Amine-Reactive Probes与抗体耦联、与配体耦联、与肽耦联、与人工合成的寡聚核苷酸耦联的探针,可用于免疫组化、荧光原位杂交、受体标记等
2)FITC (fluorescent isothiocyanate) BODIPY FL 503/512
3)异硫氰基荧光素 494/518
4)TRITC 四甲基异硫氰基罗丹明 544/572 BODIPY TMR 543/569
5)Texas Red 德州红 595/615 BODIPY TR592/618
6)PE 藻红蛋白 565/578
7)cy3 490/530
8)cy5 650/690

(1)细胞表面抗原、胞内某种蛋白
   免役荧光标记: 与抗体耦联,
   直标: 一抗+荧光探针
   间标: 二抗+荧光探针  如: 微管蛋白 抗 tublin抗体+荧光探针  肌动蛋白 Palloidine+荧光探针
(2)细胞膜表面受体
   配体+荧光探针  如: nAchR、mAchR、多巴胺受体(D1,D2)
   标记 Gm1: 霍乱毒素受体  霍乱毒素+FITC

2.标记细胞器荧光探针
(1)线粒体 Mitochondria Rodamin 123 505/534 ,可染活细胞,阳离子性,可检测线粒体膜电位, 且在多数细胞中停留时间短
   JC1 线粒体膜电位低时为单体 490/527 发绿光
   线粒体膜电位低时为多聚体 490/590 发红光
   可标记活细胞线粒体,且为检测线粒体膜电
   位最佳探针: Mitotracker Green FM 490/516, 染活细胞或固定细胞 ,
   稳定不漏出: Mitoracker Orange CMTMRos 551/576, (氧化型)Mitoracker Orange 还原型, 只能染活细胞
(2)溶酶体 Lysosome中性红 541/640: 微偏碱性, 可标记溶酶体等酸性器官为非特异性
   AO : LysoTracker Green DND-26 504/511, 染活细胞  LysoTracker Blue  LysoTracker Red
(3)内质网 Endoplasmic Reticulum   DiOC6 484/500: 非特异性, 较高浓度标记内质网,较低浓度标记线粒体
(4)高尔基体 Golgi apparatus  NBD C6-ceramie 466/536, 可染活或死细胞 ¨细胞器的单克隆抗体
(5)细胞核 PI propidium iodide 536/617 DNA/\RNA 死细胞
  碘化丙啶EB ethidium bromide 518/617 DNA/RNA 死细胞
  Hochest 33342 352/461 DNA A-T 活细胞
  Hochest 33258 (同上)
  DAPI 358/461 DNA A-T 半通透细胞
  Chromomycin A3 450/470 DNA G-C
  AO 500/526 DNA 活细胞
  460/650 RNA TOTO-1 514/533 DNA   死细胞
  SYTO 活细胞
3. GFP 绿色荧光蛋白
GFP的的发现:60年代,Shimomura等首先从水母中分离出一种水母发光蛋白(aequoren),该蛋白与钙和肠腔素结合后可产生蓝色荧光。然而水母整体几提取的颗粒都呈绿色,后经证实在水母体内还存在另外一种发光蛋白即绿色荧光蛋白 GFP, 后经研究表明,在水母体内Ca2+和肠腔素与水母发光蛋白结合后,水母发光蛋白产生蓝色荧光,GFP在蓝光的激发下,产生绿色荧光 。将外源基因与GFP DNA 相连, GFP可作为外源基因的报告基因实时监测外源基因的表达.
GFP主要应用: 对活细胞中的蛋白质进行准确定位及动态观察
如: 可实时原位跟踪特定蛋白在细胞生长、分裂、分化过程中的时空表达
GFP基因与分泌蛋白基因连接后转染细胞, 可动态观察该分泌蛋白分泌到细胞外的过程
GFP基因与定位于某一细胞器特殊蛋白基因相连,就能显示活细胞中细胞核、内质网、高尔基体、线粒体等细胞器的
结构及病理过程:定位与定量测量应注意的问题
定位:1.可以对图像进行修饰,
      2.pinhole 可尽可能的小。
      3.确认共定位时要取两个通道荧光相互干扰的对照图像
定量:
      1.仪器的各个条件必须一致
      2.必须用原始图像进行定量测量
      3.Pinhole尽可能的大
六.显微CT与三维重组
光切的层数:VoxelsizeZ £ 2VoxelsizeX
七.动态测量 Physiology:细胞内离子动态变化测量
1).游离Ca2+测量
    检测游离Ca2+变化荧光探针的原理:这类探针多为Ca2+螯合剂,不与Ca2+结合时不发荧光,通常也不能进入细胞膜,只有与乙酰甲酯AM相连方可进入细胞内,被细胞内酯酶水解后并与胞内游离钙结合后发出荧光。Kd值为Ca2+解离常数,表明检测Ca2+浓度的范围:0.1xKd-10xkd, Kd和很多因素有关,如pH、 Mg2+、与蛋白的结合、温度等。细胞内生理Ca2+浓度值(10-100n M),细胞内Ca2+超载浓度值(基础Ca2+浓度的10倍左右)
            荧光探针                           激发波长          发射波长 Kd
            FLuo3-AM, K+,                    dextran 506nm       525nm 390nM  
            Fluo4                              506nm               525nm    
            Calcium Green-1 507nm              530nm               190nM
            Calcium Green-2 507nm              535nm               550nM
            Fura red   420/480nm               637nm               140nM
            Oregon Green 488  494nm            520nm               20,000nM
            Calcium Crimson   583nm            602nm                328nM
            Indo-1   356nm                    405/458nm             230nM
            Fura-2     340/380                 476nm                145nM
相对 测量
                 
            DF/F=(F-Fbase)/(Fbase-FBG)
            Ca2+浓度绝对测量
单波长公式法
            Fluo3: 530nm Kd=450nM
            [Ca2+]I =Kd(F-Fmin)/(Fmax-F)
            Fmin: 细胞内无钙时的荧光强度( MnCl2)
            Fmax:细胞内钙饱和时的荧光强度(A23187)
            测量时切记细胞内静息Ca2+浓度的相对荧光强度值不能太低(F值不低于40)
            细胞内生理Ca2+浓度值(10-8 -10-7 M)
            细胞内Ca2+超载浓度值(基础Ca2+浓度的10倍左右)
            标准曲线法:根据仪器条件和负载条件,以不同Ca2+浓度的Buffer(EGTA- Ca2+)做标准曲线,横轴为Ca2+浓度,纵轴为荧光强度
            比例荧光的测量:双波长(比例荧光:ratio) Indo1(360, 420/480), fura2(340/380, 440)[Ca2+]I =Kd(R-Rmin)/(Rmax-R)Ff2/Fs2
细胞器的Ca2+测量
            1.线粒体内游离Ca2+测量  Fluo-3 + TMRM(线粒体荧光探针,红色)
            2. 特异定位的重组水母发光蛋白  水母发光蛋白与 Ca2+结合后发蓝光  用含有水母发光蛋白和含有特定细胞器蛋白的表达载体转染细胞,可测定亚细胞器内的游离Ca2+变化 目前已商品化的探针可检测:线粒体、内质网、细胞核内的游离Ca2+,因生物发光很弱不能使用Confocal检测
细胞内游离Ca2+测量的应用:
钙的特性
            1.细胞内外的电化学梯度103-104倍
            2.细胞膜渗透性稍有改变或钙库释放稍有增加,导致胞内钙明显升高
            3.细胞内钙为细胞激活“开关”
细胞内钙的生理作用
            1.肌肉的兴奋收缩-收缩偶联
            2.神经递质的释放
            3.学习记忆的增强
            4.卵子受精
            5.细胞分裂和再生
            6.细胞调亡
            7.细胞间通讯
            8.细胞信号传导
            9. DNA合成
            10. 基因表达
细胞内钙超载与疾病
            1.高血压、脑缺血、心脏病、内分泌病—胞内钙浓度异常
            2.糖尿病、风湿性关节炎、多发性硬化病—胞内钙浓度增高
            3.人体缺钙—骨钙大量丢失,神经细胞的钙浓度增高
            4.老化和老年性痴呆-神经细胞内钙浓度增高
细胞内生理Ca2+浓度值(10-8 -10-7 M),细胞内Ca2+超载浓度值(基础Ca2+浓度的10倍左右)
八.荧光漂白恢复(FRAP: Fluorescence Recover after photobleaching)
定义:经荧光探针标记的细胞的某一区域一旦被高强度的激光照射后,荧光物质的光化学结构被迫坏,荧光强度下降, 且为不可逆的过程, 但此处荧光强度会渐渐恢复, 荧光强度和恢复的快慢和多少,代表周围分子扩散的速率, 或分子运动速度。
            R=(I2-I1 /I0-I2)100%
            R-荧光漂白恢复率:代表分子的运动速度
应用:细胞间通讯, 细胞膜流动性,蛋白分子的运动
九.笼锁解笼锁的测量
定义:笼锁化合物全称为光致不稳定笼锁化合物,为人工合成的用隐蔽基团修饰生物活性分子的化合物,一旦被紫外光照射,两者间的共价键几解离而释放出活性分子,这一光解作用称为解笼锁。
笼锁化合物的种类:笼锁的神经递质、笼锁的第二信使、笼锁钙等
十.荧光能量共振转移( fluorescence Resonance Energy Transfer)能量转移:能量从分子的一个部位向另一个部位的传递,或能量从一个分子向另一个分子传递。能量的提供者叫能量供体,能量的接受者叫能量受体。
能量共振转移:分子可以看作为正负电荷分离的一个偶极子,受激发以一定的频率振动,如果其附近有一个振动频率相同的另一分子存在,则通过这两个分子之间的偶极-偶极相互作用,能量可以非辐射方式从前者转移到后者,这种能量转移称为共振转移。
荧光能量共振转移的条件
两个荧光分子:供体-FL1,受体-FL2供体与受体的距离在2-7nm,供体的发射波长与受体的激发波长一致
检测:
     以FL1的激发波长的光照射样品,没有共振转移时,只检测到 FL1的发射光(绿光),发生共振转移时,就可检测出FL1的荧光(绿光)减弱,FL2(红光)的增强。
应用:检测大分子的相互作用
大分子构象的改变(蛋白),例:大分子(亚基)的结合与分离
受体与配体的结合 ,常用荧光探剂:FITC/TRITC, Cy3/Cy5, BFP/GFP  
十一 .其它应用
生物材料,例: 细胞在生物材料中的生长状态及分布
激光扫描共焦显微镜的发展趋势:
                             连续光谱型Confocal
                             多光子激光扫描显微镜


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