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脐血脐带中干细胞分离实验—脐血来源胚胎样干细胞分离

2019.4.03
实验材料

脐带血来源的MNCs(CB-MNCs)

试剂、试剂盒

灭菌培养基TPOFLK细胞因子混合物(10 ng mL促血小板生成素50 ng mL Flt-3配体和20 ng mL c-kit配体)ACD-A缓冲液小鼠抗人CD45CD33CD47单克隆抗体抗血型糖蛋白A抗体2%人丙种球蛋白(HAG。用PBSA溶解)磁珠标记的人IgG4抗总小鼠IgG单克隆抗体0.05%胰蛋白酶含EDTAPBSA

仪器、耗材

磁分离器6孔培养板

实验步骤


(a)分离和制备CB-MNCs。


(b)根据以下免疫磁珠分选的方法纯化原始系限制性干细胞。


(c)用2%HAG处理MNCs,4℃放置20 min。


(d)用小鼠抗人CD45,CD33,CD37和抗血型糖蛋白A单克隆抗体标记MNCs,4℃标记30 min。


(e)用ACD-A缓冲液洗细胞,400g,4℃离心10 min。


(f)用ACD-A缓冲液再洗一遍。


(g)用磁珠标记的人IgG4抗总小鼠IgG单克隆抗体标记MNCs 30 min。


(h)根据产品说明书用磁分离器分离系特异性分子阴性(Lin-)的细胞群体。


(i)按以下步骤安装细胞分离装置和硅酮管:用70%乙醇灌洗10min。用水洗两遍,每次5 min。用5%BSA/PBSA润洗。用弹簧夹夹住硅酮管的下段,用带子将硅酮管安全地固定在磁分离器中。


(j)分离细胞前,用培养基加满细胞分离装置中的硅酮管,使通过柱子的流速控制在5mL/min以内。然后,用微量吸管将细胞/磁珠混合悬液加到管中,刚好低于液体的弯月面。


(k)用巴氏吸管,不断添加培养基,防止管上的细胞脱水。


(l)用15mL离心管收集流出的部分(含没有结合磁珠的细胞,Lin-细胞)。


(m)用台盼蓝染色进行活细胞计数。


(n)用含TPOFLK细胞因子混合物的培养基将UCB来源的Lin细胞接种到没有包被过的6孔培养板中,接种浓度为2.7×104个细胞/mL。


(o)将细胞在37℃,5% CO2的条件下培养,每周一次更换培养基和细胞因子。


(P)必要时,用0.05%胰蛋白酶/EDTA消化贴壁细胞,按1×105个细胞/mL浓度接种到新培养瓶中,按上述条件继续培养细胞。

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