叶绿素荧光仪原理及使用
Krause等（1980，1982）利用DCMU（敌草隆Diuron）阻断PSII受体测的原初电子受体QA到二级电子受体QB的电子传递，从而阻止了因光化学反应导致的光化学淬灭，为定量研究分析叶绿素荧光与光合作用的关系提供了可能。Bradbury等（1981，1984）利用将植物叶片快速曝光于强光下（饱和光闪）的技术，定量分析了叶绿素荧光的光化淬灭和非光化淬灭。Dietz等（1985）及Schreiber等（1986）利用微弱的调制测量光技术和饱和光闪，定量确定光化淬灭和非光化淬灭，并可持续测量叶绿素荧光相对光量子产量；Genty(1989)进一步的实验研究表明，叶绿素荧光测量可以作为一种快速非损伤的CO2同化“探针”。所有这些上世纪80年代的创造性实验研究，奠定了叶绿素荧光技术的应用基础，其中脉冲调制技术（PulseAmplitude Modulated technique，简称PAM）成为目前市场上几乎所有叶绿素荧光测量仪器的通用技术方法。Nedbal教授与PSI公司总裁Trtilek博士等首次将PAM叶绿素荧光技术与CCD技术结合在一起，研制成功了FluorCam叶绿素荧光成像技术（Nedbal等，2000），并于1997年为美国华盛顿大学提供了第一台商业FluorCam系统。FluorCam叶绿素荧光成像技术成为上世纪90年代叶绿素荧光技术的重要突破，使科学家们对光合作用与叶绿素荧光的研究一下子进入二维世界。
暗适应状态下的叶片，其原初电子受体QA处于最大氧化状态，此时我们称PSII（光系统II）处于完全“开放”状态。将充分暗适应后的叶片用微弱的调制测量光照射（光强约0.1 μmol m−2 s−1）后测得的叶绿素荧光为Fo（最小叶绿素荧光）；然后再用饱和光闪（强度一般为3000μmol m−2 s−1左右或者更高，持续时间小于1s）照射叶片，QA在短时间内全部还原，PSII完全“关闭”，此时测得的叶绿素荧光称为最大叶绿素荧光Fm，Fm与Fo之差为Fv，Fv/Fm即为PSII光化学反应的最大光量子效率。Fv/Fm可作为监测植物受胁迫的简单快速的方法，正常高等植物叶片的Fv/Fm值约为0.83-0.84。
