现代生物分离技术在多肽蛋白质分离纯化中的应用
摘要：蛋白质是生物体的重要组成部分，在现代生物制药领域有着重要的作用，本文介绍了现代生物分离技术反胶束萃取、双水相萃取和电泳在多肽蛋白质分离中的应用和现状。
关键词：蛋白质 反胶束萃取 双水相萃取 电泳
一、前言
随着基因工程和细胞工程的发展，尽管传统的分离方法(如溶剂萃取技术)已在抗生素等物质的生产中广泛应用，并显示出优良的分离性能，但它难以提取和分离蛋白质。其主要原因有两个：
被分离对象—蛋白质等在40~500C便不稳定，开始变性，而且绝大多数蛋白质都不溶于有机溶剂，若使蛋白质与有机溶剂接触，也会引起蛋白质的变性；
萃取剂问题—蛋白质分子表面带有许多电荷，普通的离子缔合型萃取剂很难奏效。
新兴的生物分离技术反胶束萃取、双水相萃取和电泳在蛋白质的分离纯化方面显示出了自身的优势，并展现出了广阔的前景。
二、反胶束萃取
2.1 反胶束萃取技术及其萃取蛋白质的机理
2.1.1 反胶束及其萃取原理
反胶束(reversed micelle)是双亲物质在非极性有机溶剂中自发聚集体，又称为反胶团、逆胶束(inverse micelle)。双亲物质的这种胶团化过程的自由能变化主要来源于双亲分子之间偶极子－偶极子相互作用，除此之外，平动能和转动能的丢失以及氢键或金属配位键的形成等都可能参与这种胶团化过程。
在反胶束内部，双亲分子极性头基相互聚集形成一个“极性核”，可以增溶水、蛋白质等极性物质，增溶了大量水的反胶束体系即为微乳液(microemulsion)。水在反胶束中以两种形式存在：自由水(free water)和结合水(bound water)，后者由于受到双亲分子极性头基的束缚，具有与主体水(普通水)不同的物化性质，如粘度增大，介电常数减小，氢键形成的空间网络结构遭到破坏等。
对于增溶了物质(如水，蛋白质等)的反胶束基本上都认为是单层双亲分子聚集的近似球体，并忽视胶束之间的相互作用。事实上，反胶束体系处于不停的运动状态，反胶束之间的碰撞频率为109~1011次/s，而且反胶束中的增溶物在频繁的交换。
2.1.2反胶束萃取蛋白质的机理
蛋白质溶解于小水池中(正萃，或称萃取)，其周围有一层水膜及表面活性剂极性头的保护，使其避免与有机溶剂接触而失活。改变pH、盐浓度等条件蛋白质又可回到水相(反萃)，实现了蛋白质的萃取分离、纯化目的。反胶团萃取蛋白质的机理目前尚不十分清楚。一般认为，萃取过程是静电力、疏水力、空间力、亲和力或几种力协同作用的结果，其中蛋白质与表面活性剂极性头间的静电相互作用是主要推动力。根据所用表面活性剂类型，通过控制水相pH高于或低于蛋白质的等电点(pI)，达到正萃反萃的目的。
2.2 反胶束萃取蛋白质的应用
2.2.1 同时提取蛋白质和油脂：陈复生等在AO-异辛烷反胶束同时萃取花生蛋白和花生油的过程，采用正交试验分析讨论了影响萃取的主要因素得到了最佳萃取工业条件。萃取后，油进入有机相而蛋白质溶入反胶束中。克服了传统方法工艺复杂，得率低，蛋白质容易变性的缺点。同时用蒸馏方法将油和烃分开，提炼出了油脂。
2.2.2 分离蛋白质混合物：Chang在Aliquat336/异辛烷反胶束分离枯草杆菌中两种酶——淀粉酶和中性蛋白酶时，通过加入助表面活性剂丁醇，有效地分离了这两种不同等电点的酶。
2.2.3 从发酵液中分离和提纯酶：Krishnakant用AOT/异辛烷体系从土豆发酵液中提取酸性磷酸酶，在pH值810，萃取水相与有机相体积比为3：1，反萃水相与有机相体积比为1：1时得到最大活性的酸性磷酸酶。Sun在CB-卵磷脂亲和反胶束中加入Tween85，直接从鸡蛋清中提取了溶菌酶。而该反胶束系统还可以回收后反复使用。
三、双水相萃取
3.1 双水相萃取的原理及特点
3.1.1 双水相萃取的原理
双水相萃取与水-有机相萃取的原理相似，都是依据物质在两相间的选择性分配，但萃取体系的性质不同。当物质进入双水相体系后，由于表面性质、电荷作用和各种力(如憎水键、氢键和离子键等)的存在和环境因素的影响，使其在上、下相中的浓度不同。分配系数K等于物质在两相的浓度比，由于各种物质的K值不同，可利用双水相萃取体系对物质进行分离。
3.1.2 双水相萃取的特点
双水相体系萃取具有如下特点：(1)含水量高(70%~90%)，是在接近生理环境的温度和体系中进行萃取，不会引起生物活性物质失活或变性；(2)分相时间短，自然分相时间一般为5~15min；(3)界面张力小(10-7~10-4mN/m)，有助于强化相际间的质量传递；(4)不存在有机溶剂残留问题；(5)大量杂质能与所有固体物质一同除去，使分离过程更经济；(6)易于工程放大和连续操作。由于双水相萃取具有上述优点，因此，被广泛用于生物化学、细胞生物学和生物化工等领域的产品分离和提取。
3.2 双水相萃取在分离和提取各种蛋白质(酶)上的应用
用聚乙二醇(PEG)/羟丙基淀粉酶(Reppal PEG)体系经两步法可从黄豆中分离磷酸甘油酸激酶(PGK)和磷酸甘油醛脱氢酶(GAPDH)。在黄豆匀浆中加入PEG4000，可絮凝细胞碎片及大部分杂蛋白。在上清液中加入PEG4000(12%)-ReppalPES(40%)，PGK在上相、GAPGH在下相的收率均在80%以上。萃取过程的放大采用离心倾析机连续处理匀浆液，用离心萃取器完成双水相体系的两相分离，整个工艺具有处理量大、接触时间短、酶收率高的特点。用PEG/(NH4)2SO4双水相体系，经一次萃取从A-淀粉酶发酵液中分离提取α-淀粉酶和蛋白酶，萃取最适宜条件为PEG1000(15%)-(NH4)2SO4(20%)，pH=8，α-淀粉酶收率为90%，分配系数为19.6，蛋白酶的分离系数高达15.1。比活率为原发酵液的1.5倍，蛋白酶在水相中的收率高于60%。通过向萃取相(上相)中加进适当浓度的(NH4)2SO4可达到反萃取。实验结果表明，随着(NH4)2SO4浓度的增加，双水相体系两相间固体物析出量也增加。固体沉淀物既可干燥后生产工业级酶制剂，也可将固体物加水溶解后用有机溶剂沉淀法制造食品级酶制剂.
Harris用双水相体系从羊奶中纯化蛋白，研究了牛血清清蛋白(OSA)、牛酪蛋白、β-乳球蛋白在PEG/磷酸盐体系中的分配以及PEG相对分子质量、pH值和盐的加入对3种蛋白分配的影响。实验结果表明。增加NaCl浓度，可提高分配系数，最佳pH为5。对OSA和牛酪蛋白，可得到更高的分配系数。在含有疏水基葡聚糖中，蛋白质和类囊体薄膜泡囊的分配研究表明，苯甲酰基葡聚糖和戊酰基葡聚糖具有疏水性。疏水基影响氨基酸、蛋白质和薄膜泡囊在双水相体系中的分配，在只有磷酸盐缓冲溶液的PEG8000/葡聚糖双水相体系中，大部分β-半乳糖苷酶被分配在上相，但在下相中加入少量的苯甲酰基葡聚糖(取代程度为0.054)或戊酰基葡聚糖(取代程度为0.12)时，β-半乳糖苷酶的分配系数就降低了100倍。在对牛血清清蛋白、溶菌酶、脂肪酶和β-乳球蛋白的分配进行的观察中发现具有相似的现象。类囊体薄膜泡囊的分配受疏水基的影响特别大，薄膜泡囊被分配在含有疏水基的一相中。在含有N，N-二甲基甲酰胺的聚合物双水相中，利用逆流分配可对玉米醇溶蛋白进行分级分离。Miyuki在PEG/K3PO4双水相体系中用两步法对葡糖淀粉酶进行了萃取纯化。用第一步萃取后含有酶的下相和PEG组成双水相作为第二步萃取体系，称作两步法。葡糖淀粉酶的最佳分配条件是PEG4000(第一步)、PEG1500(第二步)，pH=7，纯化系数提高了3倍。
四、电泳
4.1 电泳的定义原理及优点
在电场作用下，带电颗粒在溶液中的运动称为电泳，在小离子的情况下，称为离子导电性现象。这是一种不完全的电解现象，所需的产物不是直接释放在电极上，而是使它们不同的运动同步受阻在两电极间的中间位置上。它能分离非常类似的物质，包括不同的蛋白质，提高了分折和制备的效果，特别是在纸上和在聚丙烯酰胺或琼脂糖凝胶上区带电泳的采用。
电泳是分离生化物质的一种有效的和多功能的方法。在电场的作用下，电泳流动性的差别，可用于许多物质的分离，其中包括离子、胶体、细胞物质、细胞器以及全细胞。以前电泳仅用于常规的生化分析，但近期在制备电泳上取得了许多重大的进展（如低容积高价值的化合物或试剂的生产中）。
电泳分离的优点是分辨率高和能保持产物的生物活性。
4.2 毛细管电泳(CE)
毛细管电泳是一类以毛细管为分离通道，以高压直流电场为驱动力的新型液相分离技术。毛细管电泳具有多种分离模式：毛细管区带电泳(CZE)、毛细管等速电泳(CITP)、毛细管等电聚焦(CIEF)等。应用毛细管电泳分离多肽类物质具有柱效高、分析时间短、所用样品量和试剂少等优点。黄志东等使用MECC在8min分离了7种肽类物质。
与高效液相色谱相比，CE的制备总量低，只适用于微量制备；对扩散系数小的生物大分子而言，CE比HPLC的分辨率高得多，因此CE被用来作为收集非常纯的单一馏分的微量制备手段。
4.3 二维凝胶电泳技术(two－dimensional del electrophoresis，2-DE)
2-DE是1975年由O’Farrell首次建立的，其基本原理是根据蛋白质具有不同等电点和相对分子质量的二个一级特性，将蛋白质的混合物在等电聚焦电泳(isoelectric focusing，IEF)中进行第一维的分离，然后转入十二烷基磺酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)进行第二维分离，分离胶经显色后，通过商业化的计算机软件对凝胶图像进行分析处理。
经典的22DE采用载体两性电解质(carrier ampholyte CA)进行等电聚焦，这种方法重复性差、pH梯度不稳定，因此，限制了2－DE的广泛应用。1988年，固相化pH梯度胶条(immobilized PH gradients， IPGs)技术的建立，克服了CA的缺点。IPGs技术的应用为各实验室间的交流、蛋白质图谱及蛋白质数据库的建立奠定了基础。
生物体内的蛋白质除数量多之外，还具有不同的丰度、相对分子质量、酸碱度以及可溶性、疏水性的不同，因此2－DE的一次分离不能完全呈现所有的蛋白质，尤其对于组织和细胞内低丰度蛋白质、极酸和极碱性区蛋白质、高分子质量区蛋白以及膜蛋白等。针对以上缺点，研究者对2－DE进行了许多改进，如采用窄范围的pH胶条(2～3pH单位和1pH单位)、预分离技术、预分离技术与窄范围pH胶条的联合应用等。这些技术的应用改善了2－DE的分辨率，提高了低丰度蛋白质和膜蛋白的检出率。
二维差异凝胶电泳(two2－dimensional difference gel electrophoresis，2D-DIGE)是二维电泳技术的另一个突破.该技术应用两种不同的荧光染料Cy3和Cy5，分别标记不同的蛋白质样品，然后将两种样品等量混合，在同一2-DE中分离.通过在同一块胶上对比一个蛋白点处两种不同荧光的强度，比较两种状态下特定蛋白质丰度变化、蛋白质的缺失或是否有新蛋白质的出现等。DIGE克服了二维电泳过程中不同凝胶间重复性差的问题；同时可以在同一块胶上更精确直观地观察两种样品蛋白质的差异表达并对其定量。
五、结论
随着生物分离技术的发展、新的生物分离技术的不断出现，为蛋白质的分离提供了许多新的方法和途径。但其中仍然有许多问题，如成本过高，分离量少，难以实现工业化等。还需要我们不懈努力改进。
