FLIPRTETRA系统检测细胞内PH值变化的实验（一）
简介
FLIPRTETRA系统可用于完成多数细胞基础的实验研究。本篇应用研究推荐了细胞内pH值检测实验在FLIPR上运行的基础方案。实验在贴壁细胞上完成，同时还讨论了一些重要参数的优化。因为每种细胞系都有其独有的特性，每个研究人员在进行自己的实验时都需要进行单独的优化。
细胞内 pH 实验的原理
Na+/H+ exchanger（NHE）排出氢离子同时泵入钠离子，以维持pH稳定性。BCECF是pH敏感的染料，其在碱性条件下吸光度更高，反之酸性条件下变低。从而BCECF可被用于监测细胞内pH变化进而反应NHE活性。加入BCECF孵育细胞，之后加入NH4Cl，NH4Cl有助于促进染料进入细胞内，且NH3会造成碱性环境（高荧光信号）。当NH4Cl被FLIPR加入的溶液稀释后，NH3扩散出细胞，导致细胞内H+浓度升高，进而引起荧光信号的快速下降。这些H+将会被NHE泵出细胞（荧光信号的缓慢升高与NHE活性是相对对应的）。
细胞准备
实验前一天细胞种在多孔板中，之后的所有步骤均在96孔板或384孔板中完成。具体操作步骤如下：
1. 在96或384孔板中种上细胞
2. 加载BCECF至细胞中孵育45分钟
3. 加入20 mM NH4Cl至细胞板中以酸化细胞，孵育15分钟
4. 用含20 mM NH4Cl的缓冲液清洗细胞
5, 用FLIPR进行检测；NH4Cl缓冲液用大体积的平衡盐溶液和各种配体/对照品进行稀释。
优化细胞种板的密度是很有必要的，保证了过夜培养后每孔可以形成密度相似的均一单细胞层。通过适当的调整种板时的密度，细胞可以培养超过一天来达到实验当天的要求。粘附性弱或生长不规则的细胞需要在用多聚赖氨酸、层黏蛋白或胶原蛋白包被过的多孔板中培养。
染料加载
为了观察细胞内PH值变化，需要在细胞中加载pH敏感的荧光染料。不同的细胞类型其染料加载方案需要进行优化。
荧光染料
迄今为止，BCECF是最广泛用于细胞内pH值检测实验的荧光染料试剂。
阴离子交换蛋白抑制剂
一些类型的细胞通过阴离子交换蛋白转移阴离子至细胞外，这些阴离子包含了荧光染料。这样不仅仅导致了染料加载效果的减弱，同时导致了最终数据结果的误差；当待检测的化合物被添加后会由于细胞外染料被稀释引起记录的荧光信号值急剧地下降。（待检测化合物用不含染料的缓冲液稀释）因而，抑制阴离子交换蛋白活性是FLIPR能否成功检测的关键所在。
丙磺舒是一种阴离子交换蛋白抑制剂，被加入到加载培养基中后可以增加染料保留在细胞内的比例。已知的一个需要丙磺舒的细胞类型是CHO。尽管丙磺舒可以延缓染料从细胞内被转移至胞外，但其对细胞来说有一定的毒性，因此染料加载后的孵育时间应尽可能控制在最短时间内。 .
苯磺唑酮是另一种阴离子交换蛋白抑制剂。至今，在细胞内pH值检测实验中很少有使用到苯磺唑酮的信息。
用于染料加载的培养基
测试了几种类型的染料加载培养。最佳的培养基应能兼顾两方面——染料加载和良好的细胞反应。可能的选择有：
1. 生长培养基+10% 胎牛血清(FBS) + 20 mM HEPES
2. 生长培养基+1% FBS + 20 mM HEPES
3. Hank’s BSS 1X（不含丙磺舒）+ 20 mM HEPES +1% FBS
4. Hank’s BSS 1X（不含丙磺舒）+ 20 mM HEPES +1% BSA
• 染料加载后的孵育时间和温度
最佳的孵育时间取决于细胞类型。由于荧光染料对细胞是有毒的，所以要严格控制孵育时间。60分钟、37°C是通常对大多数细胞都有效的孵育条件，一般也作为方法开发时的起始推荐条件。
注：如果孵育30分钟可以得到一个可接受的荧光信号，建议采用更短时间的孵育条件。
细胞中酸性溶液的加载 细胞中酸性溶液的加载
这个步骤不是直接加入酸本身，而是向细胞中加入NH4Cl。当NH4Cl在细胞中形成NH3并使细胞质碱化，随后当NH4Cl被FLIPR系统添加的溶液稀释后，NH3扩散至细胞外使得细胞内残留高浓度的H+。这将激发NHE的活性并把氢离子排出至细胞外。
用于此步的溶液是200 mM NH4Cl。NH4Cl一直保留在多孔板中，直至FLIPR添加溶液使其被稀释。
化合物板准备
在本次实验中，由于染料加载后孵育的时间足够长，便于准备所需的化合物板。
准备化合物稀释缓冲液
在细胞内pH检测实验中，用于稀释化合物的缓冲液以及清洗细胞的缓冲液是不同的（与细胞内钙流及膜电位实验相比）。清洗缓冲液含有20 mM NH4Cl，而化合物稀释缓冲液不含NH4Cl。待检测化合物应稀释至实验时终浓度的1.25倍。
