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细胞中的微丝染色及微丝与细胞形态的实验观察

2019.4.18

实验概要

掌握考马斯亮蓝R250 染细胞骨架微丝的方法,了解动物细胞骨架的基本形态结构。

实验原理

真核细胞胞质中纵横交错的纤维网称为细胞骨架(cytoskeleton)。根据纤维直径、组成成分和组装结构的不同,分为微管(microtubule,  MT)、微丝(microfilament, MF) 和中间纤维(intermediate filament,  IF)。微丝是肌动蛋白构成的纤维(F-action)。单根微丝直径约7nm,在光学显微镜下看不到。本实验用考马斯亮蓝R250(Coomassie  brilliant blue,  R250)显示微丝组成的应力纤维。应力纤维在体外培养的贴壁细胞中尤为发达,形态长而直,常与细胞的长轴平行并贯穿细胞全长。细胞松弛素B  可与微丝的亚单位肌动蛋白结合,从而破坏微丝,改变细胞的形状。考马斯亮蓝R250  可以染各种蛋白,并非特异染微丝。但在该实验条件下,微管结构不稳定,有些类型的纤维太细,光镜下无法分辨。因此,我们看到的主要是由微丝组成的应力纤维。

主要试剂

1. PBS(pH7 .2)

2. 2%Triton X-100 液

3. M-缓冲液

4. 3%戊二醛固定液

5. 0.2%考马斯亮蓝染液

6. 100μL/mL 的细胞松弛素B

7. DEME 培养液

主要设备

1. 光学显微镜

2. 镊子

3. 小平皿

4. 载片

5. 吸水纸

6. 37℃恒温箱

实验材料

盖片培养的成纤维细胞C6 三片。

实验步骤

1. 成纤维细胞微丝的染色

   1) 在平皿中用盖片培养C6 成纤维细胞。

   2) 将盖片放入盛有PBS 的平皿内用吸管轻轻吹洗盖片,换液三次,每次3min,洗去培养液。

   3) 将盖片移入2%Triton X-100 液,置37℃恒温箱内处理20~30min。M-缓冲液有稳定细胞骨架的作用。

   4) 立刻将盖片移入M-缓冲液,换洗三次,每次3min。

   5) 将盖片移入3%戊二醛固定5min。

   6) 将盖片移入0.2%考马斯亮蓝染液染液中,染色15min。然后小心的用自来水冲洗,空气干燥。

2. 成纤维细胞微丝对细胞松弛素B 的反应

   1) 在平皿中有三张成纤维细胞贴壁生长的盖片,在超净工作台内将一张盖片移入另一平皿中继续培养,用作对照。

   2) 在有两片的平皿内加100μL/mL 的细胞松弛素B 4 滴继续培养半h。

   3) 将用细胞松弛素B 处理过的两张盖片取一张做染色处理,另一张用培养液洗五次(在平皿内换5 次培养液,每次都要摇动),继续培养观察。2h 后细胞形态恢复,接近正常。

   4) 对恢复的盖片与第一张没用药的盖片一同做染色处理。

注意事项

1. 洗片时要轻柔,以免把细胞从载片上洗去。

2. 恢复时间要足够,否则细胞不会恢复到未处理前的情况。

3. 细胞盖片注意正反面。

4. 染色后应冲洗盖片背面,避免损伤细胞。


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