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细胞培养大攻略5

2019.11.03

24、昆虫细胞培养的最适PH值和渗透压是多少? 
 

生长培养基的PH值对细胞的增值和病毒或重组蛋白的生产均会产生影响。对于大部分鳞翅类昆虫细胞系,在PH值 6.0-6.4范围的大部分应用效果良好。培养鳞翅类昆虫细胞系时,培养基的最适渗透压是 345-380 mOsm/kg.。为保证可靠和持久的细胞培养方式,减少技术问题,保持PH值和渗透压在以上所列的范围之内。

 

25、High Five细胞有任何其它名称吗? 
 

High Five细胞也被称为Trichoplasia ni 5B1-4和BTI-TN-5B1-4。

 

26、PFHM-II 和HYBRIDOMA-SFM之间有什么差别?
 

PFHM-II (Protein-free Hybridoma Medium)是不包含有蛋白质的单克隆抗体生产培养基。如果作为杂交瘤生产培养基使用,PFHM-II可能需要补充低水平的血清。HYBRIDOMA-SFM即是杂交瘤生产培养基,也是单克隆抗体生产培养基。它包含低水平的蛋白质。

 

27、在High Five无血清培养基中去污剂的浓度是多少? 
 

High Five无血清培养基中去污剂的浓度:0.025 g/L Tween-80,1.0 g/L Pluronic Poly-all。

 

28、High Five细胞用多大的密度冻存?
 

3.0x106 cells/ml

 

29、在我的果蝇培养基中发现形成白色沉淀,加热后溶解。它是什么?对我的细胞有害吗?
 

可能是谷氨酰胺沉淀,但是更可能是L-酪氨酸沉淀。培养基中谷氨酰胺的浓度比典型的2mM高6倍。酪氨酸的浓度比在RPMI 1640中高25倍,而且比谷氨酰胺更加难以溶解。沉淀也可能是不止一种成分的复合物。它可能是由于贮存在局部温度较低的地方引起。只要沉淀在培养条件下可以溶解,对实验不会有不利的影响。

 

30、如何从T25瓶中转移sf9细胞?能用胰蛋白酶消化吗?
 

我们强力推荐使用脱落细胞的方法,因为这项技术破坏性最小,生活力最高。正如手册上所显示,通过使用巴氏德吸液管,让细胞上培养基流动。作为一种选择你也可以轻轻拍打培养瓶。只有在绝对必要的情况下,才使用胰酶消化细胞。 胰酶消化一个T25瓶的sf9细胞:

1.  去除培养基。

2.  用2 ml 1xPBS(足以覆盖细胞表面)洗涤细胞,去除PBS。

3.  加入2 ml 1x胰酶EDTA(恰好覆盖细胞表面)。

4.  37 ℃孵育5到10分钟。在仪器下检测看到5分钟后它们正在向上移动。

5.  向细胞中加入2 ml 细胞培养液,移入锥形管,用2 ml培养液洗瓶壁,移入同一锥形管中。(培养基中的FBS终止了胰酶的活性。)

6.  离心(1100 rpm)沉淀细胞。去除培养基。

7.  用新的培养基重新悬浮细胞。传代。

 

31、在Sf9, Sf21, 和high Five细胞悬浮培养时,肝素的使用量是多少?
 

为了防止悬浮培养细胞聚集的形成,使用肝素浓度为10单位/毫升细胞悬液。

 

32、如何评估ES细胞合格的胎牛血清?
 

使用D3 ES细胞。这是一个对于胎牛血清中生长促进、生长抑制和分化因子非常敏感的细胞系。 相关生长效率分析: 当ES细胞以非常低的密度传入包含10%胎牛血清的生长培养基中,检测开始和支持ES细胞克隆的能力。 细胞毒分析: 当以非常低的密度传入包含30%胎牛血清的生长培养基中,检测ES细胞和feeder细胞的生长能力。 相关形态学和分化分析: 检测胎牛血清支持未分化ES细胞克隆的能力。通过碱性磷酸酶活性评估分化程度。未分化的ES细胞小颜色深红粉红,分化的细胞较大,丰满,颜色较浅。 所有的分析在没有ESGRO的情况下进行的,培养基中出现ESGRO会掩盖由胎牛血清所导致的问题。(ESGRO或LIF经常用来保持ES细胞处于未分化状态。) 经过培养发现,大约8批中有1批可以用来培养ES细胞。

 

33、在重新冻存sf9细胞前,它可以传多少代?随着传代的次数的增加,它的感染能力会降低吗?
 

通常情况当细胞经过30次传代后,应该返回冻存。无论什么时候记数时,都应该检查细胞活力。如果超过95%的细胞保持有活力和在大约30小时左右加倍,细胞仍然可以使用。如果活力和加倍时间下降,它们的感染力将不在是有效的。
 

34、如何选用特殊细胞系培养基?
 

培养某一类型细胞没有固定的培养条件。在MEM中培养的细胞,很可能在DMEM或M199中同样很容易生长。总之,首选MEM做粘附细胞培养、RPMI-1640做悬浮细胞培养是一个好的开始。
 

35、何时须更换培养基?
 

视细胞生长密度而定, 或遵照细胞株基本数据上之更换时间,按时更换培养基即可。
 

36、可否使用与原先培养条件不同之培养基?
 

不能。每一细胞株均有其特定使用且已适应之细胞培养基, 若骤然使用和原先提供之培养条件不同之培养基, 细胞大都无法立即适应, 造成细胞无法存活。
 

37、可否使用与原先培养条件不同之血清种类?
 

不能。血清是细胞培养上一个极为重要的营养来源,所以血清的种类和品质对于细胞的生长会产生极大的影响。来自不同物种的血清, 在一些物质或分子的量或内容物上都有所不同,血清使用错误常会造成细胞无法存活。
 

38、何谓FBS, FCS, CS, HS ?
 

FBS (fetal bovine serum) 和FCS (fetal calf serum) 是相同的意思, 两者都是指胎牛血清, FCS 乃错误的使用字眼, 请不要再使用。CS (calf serum) 则是指小牛血清。HS (horseserum) 则是指马血清。
 

39、培养细胞时应使用5 % 或10% CO2?或根本没有影响?
 

一般培养基中大都使用HCO3-/CO32-/H+ 作为pH 的缓冲系统, 而培养基中NaHCO3 的含量将决定细胞培养时应使用的CO2 浓度。当培养基中NaHCO3 含量为每公升3.7 g 时,细胞培养时应使用10 % CO2;当培养基中NaHCO3 为每公升1.5 g 时, 则应使用5 % CO2 培养细胞。

 

40、Hank's 平衡盐溶液(HBS)要在空气中使用,不需要CO2培养箱。原因是什么?Hank's 平衡盐溶液(HBS)和Earle's平衡盐溶液(EBS)有什么本质的功能差别?
 

HBS和 EBS 的主要差别在于碳酸氢钠的水平,在Eagles (2.2 g/L)中比在Hanks (0.35 g/L) 中高。碳酸氢钠需用高水平的CO2平衡,以维持溶液的PH值。Eagles液在空气水平的CO2 中,溶液会变碱,Hanks液在CO2培养箱中会变酸。如果希望在CO2培养箱中保存组织,需要用Eagles液,。如果仅仅是清洗将要在细胞培养基中储存的组织,用Hanks液就可以了。
 

41、细胞之接种密度为何?
 

依照细胞株基本数据上之接种密度或稀释分盘之比例接种即可。细胞数太少或稀释的太多亦是造成细胞无法生长之一重要原因。
 

42、悬浮性细胞应如何继代处理?
 

一般仅需持续加入新鲜培养基于原培养角瓶中, 稀释细胞浓度即可, 若培养液太多时, 可将培养角瓶口端稍微抬高, 直到无法容纳为止。分瓶时取出一部份含细胞之培养液至另一新的培养角瓶, 加入新鲜培养基稀释至适当浓度, 重复前述步骤即可。
 

43、冷冻管应如何解冻?
 

取出冷冻管后, 须立即放入37 °C 水槽中快速解冻, 轻摇冷冻管使其在1 分钟内全部融化, 并注意水面不可超过冷冻管盖沿, 否则易发生污染情形。另冷冻管由液氮桶中取出解冻时, 必须注意安全, 预防冷冻管之爆裂。


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