细胞计数实验_显微镜直接计数法
细胞计数实验可以用于：（1）细胞悬液制备后，计算悬液中所含细胞数量；（2）检查细胞活力。
| 实验方法原理 | 显微镜直接计数法是将小量待测样品的悬浮液置于一种特别的具有确定面积和容积的载玻片上（又称计菌器），于显微镜下直接计数的一种简便、快速、直观的方法。目前国内外常用的计菌器有：血细胞计数板。Peteroff-Hauser 计菌器以及比 Hawksley 计菌器等，它们都可用于酵母、细菌、霉菌孢子等悬液的计数，基本原理相同。后两种计菌器由于置上盖玻片后，总容积为 0.02 mm，而且盖玻片和载玻片之间的距离只有 0.02 mm，因此可用油浸物镜对细菌等较小的细胞进行观察和计数。除了用这些计菌器外，还有在显微镜下直接观察涂片面积与视野面积之比的估算法。此法一般用于牛乳的细菌学检查。 本实验以血球计数板为例进行显微镜直接计数。 用血细胞计数板在显微镜下直接计数是一种常用的微生物计数方法。该计数板是一块特制的载玻片，其上由四条槽构成三个平台；中间较宽的平台又被一短横槽隔成两半，每一边的平台上各刻有一个方格网，每个方格网共分为九个大方格，中间的大方格即为计数室。血细胞计数板构造如图 VIII-1。计数室的刻度一般有两种规格，一种是一个大方格分成 25 个中方格，而每个中方格又分成 16 个小方格（图 VIII-2）；另一种是一个大方格分成 16 个中方格，而每个中方格又分成 25 个小方格，但无论是哪一种规格的计数板。每一个大方格中的小方格都是 400 个。每一个大方格边长为 1 mm，则每一个大方格的面积为 1 mm2，盖上盖玻片后盖玻片与载玻片之间的高度为 0.1 mm，所以计数室的容积为，0.1 mml( 万分之一毫升）。 计数时，通常数五个中方格的总菌数，然后求得每个中方格的平均值，再乘上 25 或 16，就得出一个大方格中的总菌数。然后再换算成 1 ml 菌液中的总菌数。 设五个中方格中的总菌数为 A，菌液稀释倍数为 B，如果是 25 个中方格的计数板，则： 1 ml 菌液中的总菌数 = A／5 × 25 × 104 × B = 50000 A • B（个） 同理，如果是 16 个中方格的计数板， 1 ml 菌液中总菌数 = A／5 × 16 × 104 × B = 32000 A • B（个） |
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| 实验材料 | |
| 试剂、试剂盒 | |
| 仪器、耗材 | |
| 实验步骤 | 1. 菌悬液制备 以无菌生理盐水将酿酒酵母制成浓度适当的菌悬液。 2. 镜检计数室 在加样前，先对计数板的计数室进行镜检。若有污物，则需清洗，吹干后才能进行计数。 3. 加样品 将清洁干燥的血细胞计数板盖上盖玻片，再用无菌的毛细滴管将摇匀的酿酒酵母菌悬液。由盖玻片边缘滴一小滴，让菌液沿缝隙靠毛细渗透作用自动进入计数室，一般计数室均能充满菌液。 4. 显微镜计数 加样后静止 5 min，然后将血细胞计数板置于显微镜载物台上十先用低倍镜找到计数室所在位置，然后换成高倍镜进行计数。 调节显微镜光线的强弱适当，对于用反光镜采光的显微镜还要注意光线不要偏向一边，否则视野中不易看清楚计数宣方格线，或只见竖线或只见横线。 5. 清洗血细胞计数板 使用完毕后，将血细胞计数板在水龙头上用水冲洗干净，切勿用硬物洗刷，洗完后自行晾干或用吹风机吹干，镜检，观察每小格内是否有残留菌体或其他沉淀物。若不干净，则必须重复洗涤至干净为止。 展开 |
| 注意事项 | 1. 取样时先要摇匀菌液；加样时计数室不可有气泡产生。 2. 在计数前若发现菌液太浓或太稀，需重新调节稀释度后再计数。一般样品稀释度要求每小格内约有 5～10 个菌体为宜。每个计数室选 5 个中格（可选 4 个角和中央的一个中格）中的菌体进行计数。位于格线上的菌体一般只数上方和右边线上的。如遇酵母出芽，芽体大小达到母细胞的一半时，即作为两个菌体计数。计数一个样品要从两个计数室中计得的平均数值来计算样品的含菌量。 |
| 其他 | 内容来源于《微生物学实验第三版》 |
