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2021诺贝尔奖得主教你用BLI技术“感知痛觉”!

赛多利斯实验室
2021.10.09

近日,David Julius和Ardem Patapoutian因发现温度和触觉感受器而被授予2021诺贝尔生理学或医学奖。David Julius团队在感觉神经纤维上发现了被热、冷或化学刺激物激活的离子通道,提供了对热感觉、疼痛和瘙痒过程的分子级洞察。离子通道是一类物质交换的膜蛋白,其中有一种TRPA1离子通道,又称芥末受体(wasabi receptor),是特异表达于初级传入神经元(感觉神经元)上的跨膜受体。记得第一次吃芥末的那种酸爽吗?就是它的作用! 更关键的是TRPA1被认为是治疗慢性疼痛和瘙痒的潜在靶点。

2021诺贝尔生理学或医学奖获奖者:David Julius Ardem Patapoutian

图片来源
guokr.com/article/460413/

2019年David Julius课题组在《Cell》杂志发表题为A Cell-Penetrating Scorpion Toxin Enables Mode-Specific Modulation of TRPA1 and Pain的文章,找到了来自于澳大利亚黑石毒蝎毒液的一种特异高效的TRPA1激动剂,并揭示了其作用机理,这种激动剂是被称之为“芥末受体毒素”(WaTx)的多肽。

激动剂WaTx的结合机理

脂质体融合实验发现WaTx能够深入细胞膜,与TRPA1的胞内段结合。那结合位点在哪里呢?NMR结构解析发现,TRPA1胞内段还真的有一个口袋可能结合WaTx(如图1所示)。

图1. TRPA1胞内段的可能与WaTx的口袋,其中P622是一个重要的口袋组成氨基酸位点

离子通道与拮抗剂/抑制剂(可能是一种毒素或者药物)的相互作用是揭示其机理重要的一步,而BLI(生物层干涉)技术是最直接的检测两者相互作用的方法,使用BLI技术检测WaTx和TRPA1的互作是必要的。

不过问题又来了,离子通道蛋白是一种膜蛋白,其表达纯化一般很困难,即使能表达也只表达某一段(比如胞外段)。并且膜蛋白的缓冲液也是比较苛刻的,一不小心就全军覆没。如果能用膜提取物取代纯化的蛋白做相互作用,就可以解决很多包括各种膜受体和离子通道的亲和力检测问题了。赛多利斯Octet®分子互作分析系统基于BLI技术,能够检测浓度很低的TRPA1粗提物。

使用Octet®检测TRPA1粗提物

作者在用BLI检测前,先算了一笔账,如果细胞的浓度为2×106/mL,一个细胞上大概有1000个离子通道。那么阿伏伽德罗常数一除,这些细胞悬浮液的膜提取物中TRPA1的浓度约为 (2×106×1000×1000)/(6.02×1023) = 3.3×10−12,大概为pM级别。考虑到膜提取的损失,就定为1 pM吧。这些数字不是拍脑袋想出来的,是通过电生理方法验证过的。即使在如此低的浓度下,只要亲和力高,用Octet®也是可以检测出来的。

作者用SA(链霉亲和素)传感器固化Biotin-GSGS-WaTx,然后与表达人TRPA1细胞的膜提取物(总蛋白浓度为0.5 mg/mL)结合解离,结果如图2所示:

图2. TRPA1可以与WaTx反应,而P622A不反应,验证了结构学解析的结果(Octet® RED384)

如果设定TRPA1的浓度为1 pM,KD值为0.33 pM。可见,亲和力是非常高的,说明WaTx可以和TRPA1在体外发生直接而牢固的相互作用。

动物实验证明了WaTx导致了因受体活化而引起的钙离子通透性降低,从而抑制了神经多肽CGRP的释放,也因此阻断了神经炎症的发生。

这位诺贝尔奖获得者为什么会使用Octet®呢?

  • 非标记Direct binding是趋势,它的结果更准确

  • 快速测定亲和力,更好地对互作进行定量表征

  • 使用浸入即读的检测模式,相对于传统仪器,不受微流路限制,对粗样品耐受性高,本文就是膜提取粗样品

  • 列入《美国药典》的分子互作分析方法,文章多,认可度广

  • 使用方便,成本相对低

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当然2020年两位诺贝尔奖获得者也用到了Octet®,请看下面链接。

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-参考文献-

A Cell-Penetrating Scorpion Toxin Enables Mode-Specific Modulation of TRPA1 and Pain . Cell,2019

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