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荧光原位杂交实验方法及步骤

关键词: 荧光原位杂交来源: 

  1)探针变性

  将探针在75oC恒温水浴中温育5min,立即置0oC,5~10min,使双链DNA探针变性。

  2)标本变性

  ①将制备好的染色体玻片标本于50oC培养箱中烤片2~3h。(经Giemsa染色的标本需预先在固定液中退色后再烤片)。

  ②取出玻片标本,将其浸在70~75oC的体积分数70%甲酰胺/2×SSC的变性液中变性2~3min。

  ③立即按顺序将标本经体积分数70%、体积分数90%和体积分数100%冰乙醇系列脱水,每次5min,然后空气干燥。

  3)杂交

  将已变性或预退火的DNA探针10μL 滴于已变性并脱水的玻片标本上,盖上18×18盖玻片,用Parafilm封片,置于潮湿暗盒中37oC杂交过夜(约15~17h)。由于杂交液较少,而且杂交温度较高,持续时间又长,因此为了保持标本的湿润状态,此过程在湿盒中进行。

  4)洗脱

  此步骤有助于除去非特异性结合的探针,从而降低本底。

  (1) 杂交次日,将标本从37oC温箱中取出,用刀片轻轻将盖玻片揭掉。

  (2) 将已杂交的玻片标本放置于已预热42~50oC的体积分数50%甲酰胺/2×SSC中洗涤3次,每次5min。

  (3) 在已预热42~50oC的1×SSC中洗涤3次,每次5min。

  (4) 在室温下,将玻片标本于2×SSC中轻洗一下。

  (5) 取出玻片,自然干燥。

  (6) 取200μL复染溶液(PI/antifade或DAPI/antifade染液)滴加在玻片标本上,盖上盖玻片。

  5)杂交信号的放大(适用于使用生物素标记的探针)

  (1) 在玻片的杂交部位加150μL封闭液I,用保鲜膜覆盖,37oC温育20min。

  (2) 去掉保鲜膜,再加150μL avidin-FITC于标本上,用保鲜膜覆盖,37oC继续温育40min。

  (3) 取出标本,将其放入已预热42~50oC的洗脱液中洗涤3次,每次5min。

  (4) 在玻片标本的杂交部位加150μL封闭液II,覆盖保鲜膜,37oC温育20min。

  (5) 去掉保鲜膜,加150μL antiavidin于标本上,覆盖新的保鲜膜,37oC温育40min。

  (6) 取出标本,将其放入已预热42~50oC的新洗脱液中,洗涤3次,每次5min。

  (7) 重复步骤(1)、(2)、(3),再于2×SSC中室温清洗一下。

  (8) 取出玻片,自然干燥。

  (9) 取200μL PI/antifade染液滴加在玻片标本上,盖上盖玻片。

  6)封片

  可采用不同类型的封片液。如果封片液中不含有Mowiol(可使封片液产生自封闭作用),为防止盖片与载片之间的溶液挥发,可使用指甲油将盖片周围封闭。封好的玻片标本可以在—20~—70oC的冰箱中的暗盒中保持数月之久。

  7)荧光显微镜观察FISH结果

  先在可见光源下找到具有细胞分裂相的视野,然后打开荧光激发光源,FITC的激发波长为490nm。细胞被PI染成红色,而经FITC标记的探针所在的位置发出绿色荧光。


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