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人骨髓不连续密度梯度离心用于间充质干细胞生产

2020.7.13

人骨髓不连续密度梯度离心用于间充质干细胞生产

试剂和材料:
1. 完全培养基:α-MEM:α-低限量基础培养基,含谷氨酰胺,无核苷酸或脱氧核苷酸;添加:20%附加L-谷氨酰胺 2mmol/L、经FBS杂交瘤纯化,非热灭活、青霉素100U/ml、链霉素100μg/ml。过滤除菌。储存于4℃,不超过2周;
2. 无钙或镁的磷酸盐缓冲液;
3. 无钙或镁的Hank′s平衡盐溶液;
4. Ficoll-Paque淋巴细胞分离液;
5. 聚丙烯离心管,15ml和50ml;
6. 塑料组织培养皿,直径15cm;
7. 塑料微量移液器枪头,10μl;
8. 0.85%台盼蓝盐溶液;
9. 微量离心管;
10. 带吊桶式转头的低温台式离心机

实验方法:
1. 去除抗凝管盖子,将骨髓液转移至50ml离心管中。加入室温的HBSS,确保体积达到25ml;
2. 取另一个50ml离心管,加入20ml Ficoll-Paque淋巴细胞分离液,将25ml细胞悬液轻轻加到Ficoll上层。HBSS与Ficoll间的界面不能被破坏;
3. 关闭闸,室温1800g离心30min;
4. 离心完毕,于Ficoll和HBSS的界面收集白色细胞层,将其移至新的50ml离心管中;
5. 用HBSS将收集到的细胞悬液体积调整至3倍,室温1000g离心10min。重复洗涤;
6. 用30ml预热至37℃的CMM重悬细胞;
7. 取10μl细胞悬液加到10μl台盼蓝中,血细胞计数器评价细胞的存活率,存活率需高于80%;
8. 将30ml细胞悬液移至直径15cm组织培养皿中,于5%CO2培养箱中培养至少15h;
9. 从培养箱中取出培养皿,吸出培养基;
10. 加入20ml预热的PBSA,润洗单层细胞,弃去;
11. 重复润洗过程3次;
12. 加入30ml预热的新鲜CMM;
13. 每隔一天重复此润洗和更新培养基操作,共6天;
14. 6天后,在倒置显微镜下观察单层细胞,贴壁的、成纤维细胞样MSCs克隆在培养皿中清晰可见。有时可能有造血细胞污染的迹象,但这些细胞可以在传代时被去除。培养物达到50%—60%汇合时,可以进行MSCs培养物的扩增和冻存;


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