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二苯胺DNA比色法定量测定试剂盒使用说明

2020.5.11

主要用途

二苯胺DNA比色法定量测定试剂是一种旨在通过二苯胺与DNA的特异性结合反应,借助可见光波长的吸光峰值的变化,比色测定样品中DNA的绝对含量或浓度的技术方法。其适用于各种原核生物和真核生物的细胞或组织DNA以及环境中DNA含量分析。产品即到即用,性能稳定,简易方便,无需样品纯化,定量准确。

技术背景

二苯胺(diphenylamine)具有与DNA酸性水解脱嘌呤后释放的脱氧核糖(deoxyribose)转变的ω-羟基菊芋糖醛(ω-hydroxylevulinyl aldehyde)特异性反应的功能,形成蓝色复合物。但不与RNA的核糖 (ribose)反应。通过可见光(600nm)吸收可以进行定量分析。因此避免了A260测定的种种限制,例如对样品的纯化要求、对DNA的单链双链的要求和对紫外光UV的需求,以及RNA的干扰。

产品内容

缓冲液(Reagent A)  8毫升

分解液(Reagent B)  8毫升

反应液(Reagent C) 25毫升

稳定液(Reagent D)     125微升

标准液(Reagent E)       200微升

产品说明书                     1份

保存方式

保存稳定液(Reagent D)和标准液(Reagent E)在4℃冰箱里,其余的保存在室温下;其中反应液(Reagent C)和稳定液(Reagent D),具有腐蚀性,注意操作安全,且避免光照,有效保证6月

用户自备

1.5毫升离心管:用于样品操作的容器

恒温水槽:用于反应物孵育

比色皿:用于比色分析的容器

分光光度仪:用于样品比色测定

实验步骤

  • 测定准备

  • 准备好待测样品,置于冰槽里

  • 设定好分光光度仪:波长600nm,并置零

  • 准备好9个1.5毫升离心管,标记为1至9号管

  • 按照下表配制标准液

  • 放进冰槽里备用,避免光照

管号

缓冲液(Reagent A)

标准液(Reagent E)

  标准DNA浓度

1

0

20微升

20微克/10微升

2

5微升

15微升

15微克/10微升

3

10微升

10微升

10微克/10微升

4

12微升

8微升

8微克/10微升

5

14微升

6微升

6微克/10微升

6

16微升

4微升

4微克/10微升

7

18微升

2微升

2微克/10微升

8

19微升

1微升

1微克/10微升

9

20微升

0

0

二、比色测定

实验开始前,小心移取6毫升反应液(Reagent C)和30微升稳定液(Reagent D)到15毫升锥形离心管,混匀后,标记为反应工作液,避免光照。然后进行下列操作。

  • 准备至少10个新的1.5毫升离心管作为测定管:标记9个标准管和1个待测样品管

  • 分别加入140微升缓冲液(Reagent A)到每一个标准管和样品管

  • 分别加入10微升上述配制的标准液(Reagent E)到相应测定管里(注意:浓度和管号对号入座)

  • 加入10微升待测样品到样品管里

  • 分别加入150微升分解液(Reagent B)到所有测定管里

  • 放进70℃干式恒温槽或恒温水槽孵育20分钟

  • 在室温下静置,直至试管温度降温到室温(15至30分钟)

  • 分别加入600微升含有反应液(Reagent C)稳定液(Reagent D)反应工作液到所有测定管里

  • 放进37℃培养箱(暗室环境)孵育5小时

  • 即刻分别移入到1毫升比色皿,放进分光光度仪读数:获得吸光读数

  • 构建标准曲线:纵座标(Y轴)为吸光单位(OD);横座标(X轴)为标准DNA浓度(微克/10微升)

  • 根据标准曲线获得样品对应DNA浓度(微克/10微升)

  • 样品实际DNA浓度:

[根据标准曲线获得样品对应DNA浓度(微克/10微升)X样品稀释倍数]÷100=微克/毫升

注意事项

  • 本产品为10次样本操作

  • 操作时,须戴手套

  • 系统操作时,标准样品测定只需1次

  • 反应液(Reagent C)、稳定液(Reagent D)反应工作液,避免光照

  • 操作时注意安全,尤其在使用反应液(Reagent C)、稳定液(Reagent D)反应工作液时,十分小心

  • 待测样品无需纯化,包括去蛋白、去RNA等处理

  • 计算实际浓度时,不要忘记待测样品的稀释倍数

  • 使用无水乙醇清洗比色皿

  • 本公司提供系列DNA定量分析试剂产品

质量标准

  • 本产品经鉴定性能稳定

  • 本产品经鉴定定量准确


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