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大豆源性成分核酸检测试剂盒使用说明

2020.4.23

说明

物种鉴定系列中的过敏原鉴定试剂,可针对食品中过敏原成分的特异核酸片段进行扩增,通过实时扩增曲线判定结果。本产品用于食品及其原料中过敏原大豆成分的检测,检出限0.01%

◆ 产品组成(96测试)

022062LⅡ


试剂

含量

A-大豆源-P

20μL × 8管× 12排

NG-P

 100μL × 3支

PG-大豆源-P

 100μL × 2支

适用仪器

ABI 7500、CFX 96、Mx 3005P、LineGene9600等实时荧光PCR仪。

◆ 自备耗材和仪器

①冰盒;②移液器(0.5-10μL,10-100μL,100-1000μL)及配套灭菌吸头;③离心机;④涡旋混匀器;⑤金属浴。

◆ 注意事项

1.本试剂检测灵敏度高。为了防止污染,实验要分区操作。

1)第一区:样本制备区。

2)第二区:模板添加区。

3)第三区:扩增及产物分析区。

分区之间最好进行物理性隔离,避免人为因素造成的污染。

2.实验过程中穿戴工作服和乳胶手套,不同区域独立使用工具,需更换手套和实验服。

3.严格按照操作步骤操作,试剂配制和加样等步骤请严格按照说明书要求在冰盒上操作。

4.反应液中的成分对光敏感,应避光保存。试剂使用前要完全解冻,但应避免反复冻融,推荐使用前离心30秒,并按检测频次将反应液以适当体积分管保存。

5.反应结束后,扩增管请置于密封袋内丢弃,当日清理,开盖易造成气溶胶污染,禁止开盖。

6.不同批号试剂请勿混合使用,在有效期内使用。

样品处理

参照《SN/T 1961.19-2013 出口食品过敏原成分检测 第19部分:实时荧光PCR方法检测大豆成分》或其他标准处理样品,制备的样本保存待用。

称取300mg已制备好的样品提取DNA。

样品的采集和制备是过敏原成分鉴别的重要步骤,防止交叉污染的措施按照GB/T 27403中的规定执行。

详细步骤请按照标准操作或查阅食安通软件。

◆ 实验操作

1.模板制备(样本制备区)

建议使用配套动物基因组DNA提取试剂盒,具体过程详见产品说明书。

2.添加模板(模板添加区,放置于冰盒上进行)

剪下所需测试数的已含有反应液的PCR管,放置在室温待解冻后,离心30秒后揭开封口膜,向每管反应液中分别加入5μL模板,顺序为NG、待测样品模板、PG-大豆源-P。盖好配套的PCR管盖后,涡旋混匀30s,离心1min,立即进行PCR扩增反应。

3.扩增反应(扩增及产物分析区)

使用荧光定量PCR仪,荧光基团选择FAM,淬灭基团选择TAMRA。

按下列条件设置扩增反应:

PCR循环

荧光收集位点



  50℃

2分钟

1个循环

  95℃  

10分钟

1个循环

  95℃   

15秒

40个循环

  60℃   

1分钟


4.基线和阈值设定

基线调整取3-15个循环的荧光信号,阈值线应超过阴性对照扩增曲线的最高点。

◆ 结果判定

检测样品Ct值≤35,则判定为被检样品阳性,检出过敏原大豆成分。

检测样品Ct值=40,则判定为被检样品阴性,未检出过敏原大豆成分。

检测样品35<Ct值<40,则重复一次。如再次扩增后Ct值仍为<40,则判定为被检样品阳性,检出过敏原大豆成分。如再次扩增后Ct值=40,则判定为被检样品阴性,未检出过敏原大豆成分。

  • NG反应为平滑直线,PG反应为“S”型扩增曲线,此次检测结果有效,否则无效。


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