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凝集反应实验原理和方法(直接凝集反应和间接凝集...(2)

2020.9.14

(一)正向间接血凝试验

 

将绵羊红细胞或人的“ O”型红细胞用醛类固定(称为醛化,可改变血球表面性质,使其易于吸附蛋白质类抗原,并可长期保存使用),再将可溶性抗原吸附于醛化的血细胞上,制成抗原致敏的红细胞,当与相应的抗体结合,使红细胞被动的聚合在一起,出现肉眼可见的凝集现象,常用于检测传染病抗体或自身抗体。

实验材料

( 1)抗原制备:将伤寒杆菌接种在培养基上,37oC培养24小时,用生理盐水洗下,100oC水浴2小时,离心弃上清,稀释后备用。

( 2)致敏红细胞的制备:取稀释的抗原与等体积的已醛化的2%SRBC混合,37oC水浴2小时,每隔15分钟振摇一次,取出后洗涤弃上清,稀释成0.5% 备用。

( 3)试管、试管架、刻度吸管、恒温水浴箱。

实验方法

( 1)取8支小试管排列于试管架上,依次编号。每管加入0.25ml生理盐水。于第1管内加入1:10稀释的免疫血清0.25ml混匀,倍比稀释至第7管。第8管为阴性对照。

( 2)每管中加入0.25ml致敏绵羊红细胞,振摇试管架,使之充分混匀。

( 3)将试管架静置于37oC恒温水浴箱中1小时。

 

正向间接血凝试验操作程序

 

结果分析

( 1)首先观察阴性对照管,应无凝集现象,管底红细胞沉积呈圆形,边缘整齐,轻轻摇动则沉积菌分散均匀呈混浊现象。

( 2)观察实验管,凝集现象可根据强弱程度,分为五级:

++++ 细菌全部凝集,管底形成大片凝集物。

+++ 细菌大部分凝集,管底的片状凝集物较小而薄。

++ 约半数的细菌发生凝集,管底出现凝集环。

+ 仅有少部分细菌凝集,管底可见沉积的细菌周边有稀疏、点状的凝集物。

— 液体混浊,无凝集。

( 3)血清抗体效价的判定:以出现明显凝集现象(++)的血清最高稀释度作为受检血清的抗体效价。

注意事项

• 红细胞需来自同一个体、批号相同,且致敏血球应新鲜配置。

• 使用器材必须清洁,否则对结果有很大影响。

(二)反向间接血凝试验

将特异性抗体吸附于醛化的红细胞上,再与相应抗原结合,在适量电解质存在条件下,红细胞被动聚集出现肉眼可见凝集现象。用于检测标本中的相应可溶性抗原。

【 实验材料 】

( 1)1:20抗—HBs致敏的醛化血球、纯化的1:20抗—HBs、待检血清、稀释液。

( 2)“V”型微量血凝板,0.025ml稀释棒、微量搅拌器、刻度吸管、滴管(40滴/ml)。

【 实验方法 】

( 1)配制致敏血球悬液 于每瓶冻干诊断血球加4ml稀释液,轻轻旋摇使成均匀血球悬液,浓度约为0.6%。

( 2)正式试验

① 在“V”型微量血凝板上,每份待检血清设立8孔,于各孔内用40滴/ml滴管各加1滴稀释液(相当于0.025ml)。

② 用0.025ml容量的稀释棒蘸满待检查血清分别依次在各孔内捻转作倍比稀释(一般每孔内均需捻转10次左右),直至第7孔,第8孔为致敏血球对照。另设第9孔为阳性对照,加0.025mlHBsAg阳性血清。

③ 于每孔中加0.025ml混匀的致敏血球悬液。

④ 将血凝板置于微型振荡器上振荡1~2分钟,置37oC1小时后观察结果。

反向间接血凝试验操作程序

【 结果分析 】

不凝集:红细胞全部下沉,集中于孔底,形成致密的圆点。

明显凝集(++):红细胞于孔底形成薄膜状凝集,中央可见疏松的红点。

出现明显凝集的血清最高稀释度为 HBsAg效价,凡效价≥1:16者需进一步做中和试验。

中和试验

在血凝板上每份标本设测定排与对照排,每排 8孔。于每孔加稀释液0.025ml,用2支稀释棒蘸取被检血清,分别在2排作倍比稀释到第7孔,第8孔不含血清,为血球对照,然后,于测定排各孔加稀释液0.025ml,对照排各孔加1:20抗HBsAg0.025ml,血凝板振荡1~2分钟,置37oC30分钟。取出,于各孔加0.025ml致敏血球,振摇混匀,置37oC1小时后观察结果。

凡正式试验效价≥ 1:16,且中和试验的对照排凝集孔数至少低于测定排凝集孔数2孔者,为HBsAg阳性,否则系非特异性凝集。

【 注意事项 】

( 1)配制的致敏血球悬液一般当天用完,若置2~10oC,使用期不超过3天。

( 2)试验用的血凝板、滴管、稀释棒等器材必须十分清洁,否则易造成非特异性凝集。

• 血凝板、稀释棒用后均需用次氯酸钠( 10%v/v)浸泡过夜;滴管需煮沸10分钟,然后用水冲净,再用蒸馏水冲洗,晾干备用。


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