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黄曲霉毒素B1检测试剂盒使用说明(三)

2020.4.27

4 需要的器材和试剂

4.1 仪器:酶标仪、打印机、均质器 、氮气吹干装置、振荡器、离心机、刻度移液管、天平(感量0.01g)

4.2 微量移液器:单道20µl-200µl,100µl-1000µl、多道300µl

4.3 试剂:甲醇、正己烷、三氯甲烷或二氯甲烷 

5 样本前处理

5.1 样本处理前须知:

实验器具必须洁净并使用一次性吸头,以避免污染干扰实验结果。

5.2 配液:

配液1:样品提取液

70%甲醇,即V甲醇:V去离子水=7:3。

配液2:1×工作洗涤液

将浓缩洗涤液20倍稀释(1份洗涤液加19份去离子水)。

5.3 样本前处理步骤:

5.3.1 谷物处理方法 

1)称取2g粉碎样品于50ml离心管中,加5ml样品提取液,振荡5分钟,室温4000转/分离心10分钟;

2)取0.5ml上清,加入0.5ml去离子水,混匀;

3)取50μl进行分析。

样本稀释倍数:5    检测下限:0.15ppb

5.3.2 玉米皮、麦麸等吸水性强的样本处理方法 

1)称取2g粉碎样品于50ml离心管中,加20ml样品提取液,振荡5分钟,室温4000转/分离心10分钟;

2)取0.5ml上清,加入0.5ml去离子水,混匀;(对于毒素含量极高的样本可用35%的甲醇稀释后再测。比如取2)中的混合液0.1ml加35%的甲醇0.9ml混匀,最终样本稀释倍数为200,检测下限为6ppb。

3)取50μl进行分析。

样本稀释倍数:20    检测下限:0.6ppb

注:由于毒素在样本中的分布呈非均匀状态,取样时需多点取样充分混匀后再取2g进行试验。

5.3.3 配合饲料处理方法 

1)称取2g粉碎样品于50ml离心管中,加10ml样品提取液,振荡5分钟,室温4000转/分离心10分钟;

2)取0.5ml上清,加入0.5ml去离子水,混匀;

3)取50μl进行分析。

样本稀释倍数:10    检测下限:0.3ppb

5.3.4 食用油、花生、高油脂的饲料处理方法

1)称取2g粉碎样品于50ml离心管中,加8ml正己烷和10ml样品提取液,振荡5分钟,室温4000转/分离心10分钟;

2)去除上层液体,取0.5ml下层液体加入0.5ml去离子水,混匀,再取混匀液体0.5ml加入0.5ml 35%甲醇,振荡30S;

3)取50μl进行分析。

样本稀释倍数:20    检测下限:0.6ppb

5.3.5 酱类、麦类、饼干、糕点等食品或调料,以及饲料浓缩料等饲料处理方法

1)称取2g粉碎样品于50ml离心管中,加10ml样品提取液,振荡5分钟,室温4000转/分离心10分钟;

2)取2ml上清,加入4ml三氯甲烷(或二氯甲烷),振荡5分钟,室温4000转/分离心10分钟;

3)转移上层液体到另一容器中,下层液留置备用,向上层液中再加入4ml三氯甲烷(或二氯甲烷),充分振荡混5分钟,室温4000转/分离心10分钟;

4)去除上层液体,合并两次的下层液体并充分混匀;

5)取合并后的下层液体2ml于50-60℃氮气下吹干;

6)加入0.5ml样品提取液充分溶解干燥物,再加入0.5ml去离子水混匀;

7)取50μl进行分析。

样本稀释倍数:10    检测下限:0.3ppb

5.3.6 啤酒处理方法

1)将啤酒充分搅拌(去除CO2),取2ml啤酒样品,加入1ml蒸馏水,再加入7ml甲醇,振荡5分钟;

2)取混匀后的样品液0.5ml加入0.5ml去离子水,混匀;

3)取50μl进行分析。

样本稀释倍数:10    检测下限:0.3ppb

5.3.7 葡萄酒、酱油、醋处理方法

1)取2ml样品,加入2ml蒸馏水,再加入10ml三氯甲烷(或二氯甲烷),振荡5分钟,室温4000转/分离心10分钟;

2)取下层液体1ml于50-60℃氮气下吹干;

3)加入0.5ml样品提取液充分溶解干燥物,再加入0.5ml去离子水,混匀;

5)取50μl进行分析。

样本稀释倍数:5    检测下限:0.15ppb

6 酶联免疫试验步骤

将所需试剂从4℃冷藏环境中取出,置于室温平衡30min以上, 洗涤液冷藏时可能会有结晶需恢复到室温以充分溶解,每种液体试剂使用前均须摇匀。取出需要数量的微孔板及框架,将不用的微孔板放入自封袋,保存于2-8℃。

6.1 编    号:将样本和标准品对应微孔按序编号,每个样本和标准品做2孔平行,并记录标准孔和样本孔所在的位置。

6.2 加样反应:加标准品或样本50µl/孔到各自的微孔中,然后加酶标记物50µl/孔,再加入50µl/孔的抗体工作液,用盖板膜封板,轻轻振荡5秒混匀,25℃反应30分钟。

6.3 洗    涤:小心揭开盖板膜,将孔内液体甩干,用工作洗涤液250µl/孔充分洗涤5次,每次间隔30秒,用吸水纸拍干(拍干后未被清除的气泡可用干净的枪头刺破)。

6.4 显    色:每孔加入底物液A 50µl,再加底物液B 50µl,轻轻振荡5秒混匀,25℃避光显色15分钟(若蓝色过浅,可适当延长反应时间)。

6.5 终    止:每孔加入终止液50µl,轻轻振荡混匀,终止反应。

6.6 测吸光值:用酶标仪于450nm处测定每孔吸光度值(建议用双波长450/630nm)。测定应在终止反应后10分钟内完成。

7 结果分析

7.1 百分吸光率的计算

标准液或样本的百分吸光率等于标准液或样本的百分吸光度值的平均值(双孔)除以第一个标准液(0ppb)的吸光度值,再乘以100%,即

 百分吸光度值(%)=

A

×100%

A0



A—标准溶液或样本溶液的平均吸光度值

A0—0ppb标准溶液的平均吸光度值

7.2 标准曲线的绘制与计算

以标准液百分吸光率为纵坐标,对应的标准液浓度(ppb)的对数为横坐标,绘制标准液的半对数曲线图。将样本的百分吸光率代入标准曲线中,从标准曲线上读出样本所对应的浓度,乘以其对应的稀释倍数即为样本中待测物的实际浓度。

若利用试剂盒专业分析软件进行计算,更便于大量样本的准确、快速分析。(欢迎来电索取)

8 注意事项

8.1 室温低于25℃或试剂及样本没有回到室温(25℃)会导致所有标准的OD值偏低。

8.2 在洗板过程中如果出现板孔干燥的情况,则会出现标准曲线不成线性,重复性不好的现象。所以洗板拍干后应立即进行下一步操作。

8.3 混合要均匀,洗板要彻底,在ELISA分析中的再现性,很大程度上取决于洗板的一致性。

8.4 在所有孵育过程中,用盖板膜封住微孔板,避免光线照射。

8.5 不要使用过了有效期的试剂盒,不要交换使用不同批号试剂盒中的试剂。

8.6 显色液若有任何颜色表明变质,应当弃之。0标准的吸光度值小于0.5个单位(A450nm< 0.5 )时,表示试剂可能变质。

8.7 反应终止液有腐蚀性,避免接触皮肤。

9 贮藏及保存期

储藏条件:试剂盒于2-8℃保存,避免冷冻。

保 质 期:该产品有效期为1年,生产日期见包装盒。


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