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免疫学技术专题:组织病理实验(二)

2020.6.15

(7)切成的蜡带到20~30 cm 长时,右手用另一支毛笔轻轻将蜡带挑起,以免卷曲,并牵引成带,平放在蜡带盒上,靠刀面的一面较光滑,朝下,较皱的一面朝上。


(8)用单面刀片切取蜡片一小段,放在载玻上加水一滴,置于放大镜或显微镜下观察切片是否良好。


(9)切片工作结束后,应将切片刀取下用氯仿擦去刀上沾着的石蜡,把切片机擦拭干净妥为保存。


9.  展片、贴片


打开水浴锅,使水温维持在40~45℃,另准备30%乙醇溶液。


(1)切片时,将一碗30%乙醇溶液放于切片机旁的桌面上。


(2)用小镊子夹取预先用刀片割开的蜡带,放在乙醇溶液的水面上,使切片展开。


(3)小镊子轻轻地将连在一起的切片分开,用一个载玻片将切片完整,已展开的切片捞至温水中,使之充分展开。


(4)另取洁净的载玻片,捞起展开的切片,使其位于切片1/3处,另一端(磨边,粗糙的一端)磨面上标记或贴上标签,放于切片架上。


10.  脱蜡复水


(1)将水浴锅温度调至60℃,待水温控制在60℃时。


(2)将切片连同切片架放入一干燥的染色缸内,放入水浴锅中,盖上盖子(可密封),30 min 至蜡熔化。


(3)之后,石蜡切片经二甲苯Ⅰ、Ⅱ脱蜡各5 min,然后放入100%、95%、90%、80%、70%各级酒精溶液中各3~5 min,再放入蒸馏水中3 min。

 

11.  染色


(1)切片放入苏木精中染色约10~30 min。


(2)染色时间应根据染色剂的成熟程度及室温高低,适当缩短或延长。


(3)室温高时促进染色,染色时间可短些,否则可适当延长时间,冬季室温低时可放入恒温箱中染色。

 

12.  水洗


(1)用自来水流水冲洗约15 min。


(2)使切片颜色变蓝(或放入碱性水中也可)。


(3)但要注意流水不能过大,以防切片脱落。

 

13.  分化


(1)将切片放入1%盐酸乙醇液中褪色。


(2)约2秒至数十秒钟,见切片变红,颜色较浅即可。

 

14.  漂洗


切片再放入自来水流水中使其恢复蓝色。


15.  脱水Ⅰ


切片入50%乙醇→70%乙醇→80%乙醇中各3~5 min。


16.  复染


(1)用0.5%伊红乙醇液对比染色1~3 min。


(2)伊红主要染细胞质,着色浓淡应与苏木精染细胞核的浓淡相配合,如果细胞核染色较浓,细胞质也应浓染,以获得鲜明的对比。


(3)反之,如果细胞核染色较浅,细胞质也应淡染。可在伊红乙醇液中滴加数滴冰醋酸助染,促使细胞质容易着色,并且经乙醇脱水时不易褪色。

 

17.  脱水Ⅱ


(1)将切片放入95%乙醇中洗去多余的红色。


(2)然后放入无水乙醇中3~5 min。


(3)最后用吸水纸吸干多余的乙醇。

 

18.  透明


(1)切片放入二甲苯Ⅰ、Ⅱ中各3~5 min。


(2)二甲苯应尽量保持无水,应经常更换,或用纱布包无水硫酸铜放入染色缸内吸收水分。


(3)切片如在二甲苯中出现白雾现象,说明脱水未尽,应退回乙醇中重新脱水,否则切片难以镜检。

 

19.  封藏:中性树胶封存


因切片经二甲苯透明,使用中性树胶作为封藏剂,树胶可用二甲苯稀释至合适的稠度。


20.  封藏的方法:


(1)封片前应根据材料的大小,选用不同规格的盖玻片。


(2)材料透明后,在桌上放一张洁净的吸水纸,将含材料的载玻片从二甲苯中取出放在纸上(切片的一面向上)。


(3)迅速地在切片的中央滴一滴树胶(千万不能待二甲苯干燥后再进行),用右手持小镊子轻轻地夹住盖玻片的右侧,稍为倾斜使其左侧与封藏剂接角,然后再缓慢地将盖玻片放下,这样就可以减少或避免产生气泡。


(4)如胶液不足,可以用玻棒再滴一滴树胶从盖玻片边缘补足。


(5)如胶液过多,可在干燥以后用刀刮去,并用纱布蘸二甲苯拭去残留的树胶。

 

(6)染色结果:细胞核被苏木素染成蓝色,细胞质被伊红染色呈粉红色。

 

三、免疫组化染色


1.  石蜡切片,步骤同前。切片经贴片后,60℃烤片30 min使蜡熔化,经二甲苯Ⅰ、Ⅱ各10 min,脱蜡。然后,将切片放入100%、95%、90%、80%、70%乙醇中3~5 min,再放入蒸馏水中3 min,水化。


2.  脱蜡和水化后,用PBS(pH7.4,具体看所用抗体及染色试剂说明)冲洗3次,每次3分钟。洗瓶冲洗。


3.  根据抗体的要求,对组织抗原进行相应的修复。可选步骤,具体见抗体说明书。


4.  每张切片加1滴或50 μl 3%过氧化氢,室温下孵育10分钟,以阻断内源性过氧化物酶的活性。PBS冲洗3次,每次3分钟。此步骤是对内源性过氧化物酶含量高的组织而言。


5.  除去PBS液,每张切片加1滴或50 μl 的第一抗体,室温下孵育60分钟或4℃过夜,具体参见每种抗体的说明书。PBS冲洗3次,每次3分钟。


6.  除去PBS液,每张切片加1滴或50 μl 即用型MaxVisionTM试剂或SP试剂,室温下孵育10~15分钟。PBS冲洗3次,每次3分钟。


7.  除去PBS液,每张切片加2滴或100 μl新鲜配制的DAB或AEC溶液,显微镜下观察3~5分钟(DAB)或37℃环境下10~30分钟(AEC)。


8.  自来水冲洗,苏木素复染10分钟,PBS或自来水冲洗返蓝。如果用DAB显色,则切片经过梯度酒精脱水干燥,二甲苯透明,步骤同H-E染色,中性树胶封固;如果用AEC显色,则切片不能经酒精脱水,而直接用水性封片剂封片。

收起 

注意事项

一、取材注意事项

1.  取材动作要迅速,不宜作太久的拖延以免组织细胞的成分、结构等发生变化。

2.  切片材料应根据需要观察的部位进行选择,尽可能不要损伤所需要的部分。

二、固定注意事项

1.  一般固定液,都以新配为好,配好后应贮存在阴凉处,不宜放在日光下,以免引起化学变化,失去固定作用。

2.  有些混合固定液的成份之间会发生氧化还原作用,一定要在使用前才混合,如果混合太早,固定时就没有作用了。

3.  固定材料时,固定液必须充足,一般为材料块的20~30倍,有些水分多的材料,中间应更换1~2次新液。

4.  材料固定完毕后,保存于严密紧塞或加盖的容器里,同时在容器外上标签,并随同材料在溶液中投入相应的标签,以免相互混淆。标签上注明固定液、材料来源、日期等。标签上的文字,应用黑色铅笔或绘图黑墨水书写。

三、脱水注意事项

1.  脱水必须在有盖的玻璃品中进行,防止吸收空气中的水分。

2.  在更换高一级的脱水剂时,最好不要移动材料以免损坏,可用吸管吸出器皿中的脱水剂,再用吸水吸尽器皿内剩余液,然后于皿中加入高一级脱水剂。

3.  在低浓度酒精中,每级停留不宜太长,否则易使组织变软,助长材料的解体。

4.  在高浓度或纯酒精中,每级停留的时间也不宜太长,否则会使组织变脆,影响切片。

5.  如需过夜,应停留在70%酒精中。

6.  脱水必须彻底,否则不易透明,甚至使透明剂内出现白色混浊现象。

四、透明注意事项

1.  使用透明剂时,要随时盖紧盖子,以免空气中的水分进入。

2.  更换每级透明剂,动作要迅速,一方面为了不使材料块干涸,另一方面能避免吸收湿气。

3.  在透明过程中,如果材料周围出现白色雾状,说明材料中的水未被脱净,应退回纯酒精中重新脱水,然后再透明。

 

五、透蜡注意事项

1.  尽量保持在较低温度中进行,以石蜡不凝固为度。

2.  透蜡温度要恒定,不可忽高忽低。

3.  操作要迅速,力求在最短的时间内完成石蜡透入过程,以免引起组织变硬、变脆、收缩等。


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