从包含体中溶解大肠杆菌重组蛋白实验
基本方案
实验方法原理 |
分子克隆技术能够使细菌高水平表达蛋白,因此原核表达是一个非常便利的获得重组蛋白的系统。遗憾的是这些蛋白在细菌中易于聚合和沉淀,形成难溶解的包含体,因而很难纯化。非细菌蛋白的包含体尤其普遍。虽然没有一种可用于所有蛋白的普适方法,还是有许多策略适用于包含体蛋白的溶解。本方案描述的就是这些策略之一。溶解包含体蛋白时要考虑许多步骤: ①细胞裂解; ②包含体的分离; ③洗涤包含体; ④溶解包含体; ⑤重组蛋白的复性(假如需要)。 |
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实验材料 | 表达目标重组蛋白的细菌细胞 |
试剂、试剂盒 | 复性缓冲液 溶解缓冲液 洗涤缓冲液 |
仪器、耗材 | 离心机 |
实验步骤 |
①如实验方案6所述裂解细胞。 ②4℃条件下23000g离心细胞裂解液30min。 ③倒出上清,测定沉淀的湿重。 ④用约10倍体积的洗涤缓冲液重悬沉淀,室温搅动悬浮液1h。 ⑤4℃条件下23000g离心混合物30min。 ⑥除去上清,并重悬沉淀。 ⑦重复④〜⑥步骤3次以上(直到重组蛋白的纯度>80%)。 ⑧溶解步骤⑦的沉淀物,每克湿重沉淀(由步骤③决定)加入约8ml的溶解缓冲液,在4℃条件下温和搅动混合物16〜20min。 实验提示:蛋白浓度不要超过2〜3mg/ml其他的溶解缓冲液: a.8mol/L盐酸胍,10mmol/L DTT,50mmol/L Tris-Cl(pH8.5) 每12〜15g湿重的收集细胞用15ml溶液溶解。37℃孵育混合物1h。如步骤⑨a.所述变性蛋白。 b.8mol/L脲素,2mmol/L还原型谷胱甘肽/0.2mmol/L氧化型谷胱甘肽。 每克湿重包含体沉淀使用9倍体积的缓冲液。室温孵育混合物1h。蛋白浓度不要超过2.5mg/ml。如步骤⑨,b.所述复性蛋白。 ⑨特定目的蛋白的重新折叠所需的最适条件必须通过预实验来选择。复性条件包括: a.用1.5μmol/L硫酸铜、50mmol/L Tris-Cl(pH8.5)溶液将可溶性沉淀稀释25倍,至终浓度为0.04mol/L DTT、0.24mol/L盐酸胍和约1.4μg/ml的目的蛋白。20℃孵育混合物2h。 b.缓慢将9倍体积的50mmol/L磷酸盐、50mmol/L NaCl和1mmol/L EDTA(含2mmol/L还原型谷胱甘肽/0.2mmol/L氧化型谷胱甘肽)加入溶解的沉淀中。25℃孵育混合物2〜4h。 ⑩用适合于目的蛋白的浓缩步骤来回收重折叠的蛋白(如RP-HPLC、冻干或超过滤)。
展开 |
注意事项 |
洗涤缓冲液: 100mmol/L Tris-Cl(pH8.0) 2〜4.0mol/L脲 1%(体积分数)TritonX-100 |